PREBIOTIK INULIN ASAL UMBI BUNGA DAHLIA (Dahlia variabilis … · 2017-03-18 · penelitian adalah...

i

PREBIOTIK INULIN ASAL UMBI BUNGA DAHLIA (Dahlia variabilis)

SEBAGAI FEED ADDITIVE UNTUK MENINGKATKAN

KETAHANAN TUBUH BROILER

SKRIPSI

OLEH:

DEWI YULIANA

I111 12 338

FAKULTAS PETERNAKAN

UNIVERSITAS HASANUDDIN

MAKASSAR

2016

i




SKRIPSI

OLEH:

DEWI YULIANA

I111 12 338

FAKULTAS PETERNAKAN


MAKASSAR

2016

ii




SKRIPSI

OLEH:

DEWI YULIANA

I111 12 338

Skripsi sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh

Gelar Sarjana pada Fakultas Peternakan Universitas Hasanuddin

FAKULTAS PETERNAKAN


MAKASSAR

2016

iii

iv

v

KATA PENGANTAR

Assalamu alaikum wr.wb

Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Allah SWT., atas segala karunia

dan rahmat-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan penelitian sampai dengan

penyusunan skripsi, dengan judul “Prebiotik Inulin Asal Umbi Dahlia (Dahlia

variabilis) sebagai Feed Additive untuk Meningkatkan Ketahanan Tubuh

Broiler”. Pelaksanaan penelitian dan penyusunan skripsi ini melibatkan banyak

pihak yang turut membantu memberikan bantuan baik itu berupa moriil, materi

maupun spirit kepada penulis, oleh karena itu penulis mengucapkan terima kasih

kepada :

1. Ibu Prof. Dr. Ir. Laily Agustina, MS selaku dosen pembimbing utama dan Ibu

Dr. Sri Purwanti, S.Pt., M.Si selaku dosen pembimbing anggota yang telah

memberikan bimbingan serta arahan selama penelitian dan penyusunan skripsi

ini.

2. Pimpinan Fakultas Peternakan, Bapak Prof. Dr. Ir. H. Sudirman Baco, M.Sc.,

Ketua Program Studi Peternakan Ibu Prof. Dr. drh. Hj. Ratmawati Malaka,

M.Sc., dan Dr. Ir. Budiman, MP selaku ketua Jurusan Nutrisi dan Makanan

Ternak yang telah memberikan izin, bimbingan dan kesempatan penulis untuk

melakukan penelitian dan penyusunan skripsi guna memperoleh gelar Sarjana

Peternakan.

3. Bapak Dr. Muhammad Ihsan Andi Dagong, S.Pt., M.Si. selaku pembimbing

akademik yang terus memberikan arahan, nasihat dan motivasi selama ini.

vi

4. Seluruh Dosen dan Staf Civitas Akademika Fakultas Peternakan atas segala

bantuan kepada penulis selama menjadi mahasiswi.

5. Kedua orang tua tercinta, bapak Doma dan ibunda Ida, yang senantiasa

mendoakan dan dukungan serta kasih sayang kepada penulis. Saudara

kandung tercinta kakak Maryam dan Jamilah yang selalu tanpa hentinya

memberikan semangat dan dukungan pada penulis.

6. Teman-teman satu tim penelitian Andi Waliana S, Nesmawati, Wahyu

Aryanto UAM, Rita Massolo, dan Nur Kamal Akbar terima kasih atas

bantuan, kerjasama dan dukungannya baik selama penelitian maupun pada

saat konsultasi skripsi hingga tulisan ini dapat terselesaikan.

7. Sahabat seperjuangan Mita Arifah Hakim, Tilawati, Bungatang, dan

Sulkarnain yang selalu memberikan motivasi dan semangat. Penulis takkan

melupakan kenangan bersama kalian yang penuh semangat kebersamaan,

persaudaraan dan saling menghargai. Bertemu dengan kalian, adalah

pemberian Tuhan yang paling indah.

8. Sahabat tercinta Rafidah dan St. Nurfadilah S, terima kasih atas bantuan

selama penelitian, semangat dan juga dukungan untuk terus berjuang demi

menyelesaikan studi.

9. Keluarga Besar “FLOCK MENTALITY” dan “HUMANIKA” kalian

merupakan teman, sahabat bahkan saudara, terima kasih atas indahnya

kebersamaan dalam bingkai kampus ini.

10. Semua pihak yang tidak dapat penulis sebut satu persatu. Terima Kasih atas

bantunnya.

vii

Penulis menyadari bahwa skripsi ini masih banyak kekurangan dan

kelemahan, namun besar harapan kiranya dapat bermanfaat bagi pengembangan

ilmu pengetahuan. Wassalamu Alaikum Wr. Wb.

Makassar, Agustus 2016

Dewi Yuliana

viii

Dewi Yuliana (I111 12 338). Prebiotik Inulin Asal Umbi Dahlia (Dahlia

Variabilis) sebagai Feed Additive untuk Meningkatkan Ketahanan Tubuh Broiler.

Dibawah bimbingan Laily Agustina sebagai Pembimbing Utama dan Sri

Purwanti sebagai Pembimbing Anggota.

ABSTRAK

Pembatasan penggunaan antibiotik sebagai feed additive menjadikan prebiotik

sebagai bahan alternatif yang dapat digunakan menggantikan fungsi antibiotik

dalam pakan. Umbi bunga dahlia merupakan salah satu sumber inulin sebagai

prebiotik yang sangat potensial. Penelitian bertujuan untuk mengevaluasi

pemberian tepung umbi bunga dahlia terhadap ketahanan tubuh broiler. Materi

penelitian adalah Day Old Chick (DOC) strain New Lohmann MB 202 sebanyak

160 ekor, tepung umbi bunga dahlia, dan pakan basal. Komposisi pakan basal

terdiri dari: jagung giling, polard, bungkil kedelai, kedelai, tepung ikan, meat and

bone meal (MBM), dikalsium phospat (DCP), mineral mix, lisin, dan methionin.

Perlakuan meliputi: P0 (Pakan basal tanpa tepung umbi bunga dahlia sebagai

kontrol), P1 (Pakan basal + Tepung umbi bunga dahlia 10 g/kg pakan), P2 (Pakan

basal + Tepung umbi bunga dahlia 12,5 g/kg pakan), dan P3 (Pakan basal +

Tepung umbi bunga dahlia 15 g/kg pakan). Parameter yang diamati adalah rasio

heterofil/limfosit (rasio H/L), persentase bobot limpa dan bursa fabrisius.

Penelitian menggunakan rancangan acak lengkap dengan 4 perlakuan dan 5

ulangan. Data yang diperoleh dianalisis dengan ANOVA dilanjutkan uji Duncan

taraf 5%. Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemberian tepung umbi bunga

dahlia untuk meningkatkan ketahanan tubuh broiler tidak menunjukkan pengaruh

terhadap bobot bursa fabricius, tetapi berpengaruh nyata terhadap rasio H/L dan

persentase bobot limpa. Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa

pemberian tepung umbi bunga dahlia sebagai prebiotik sebanyak 12,5 g/kg pakan

(1% inulin), mampu memperbaiki ketahanan tubuh broiler ditandai dengan

peningkatan bobot bursa fabricius, penurunan bobot limpa dan rasio H/L.

Kata kunci: Broiler, Inulin, Ketahanan Tubuh, Prebiotik, Umbi Bunga Dahlia.

ix

Dewi Yuliana (I111 12 338). Prebiotic Inulin Derived frDahlia Tuber (Dahlia

variabilis) as Feed additive for Increasing Immune Response of Broiler. Laily

Agustina as Supervisor and Sri Purwanti as Co-Supervisor.

ABSTRACT

Restrictions on the use of antibiotics as feed additive makes the prebiotic as an

alternative material that could be used to replace the function of antibiotics in

feed. Dahlia tubers is one source of inulin as a prebiotic potential. The research

was aimed to evaluate feeding effect of dahlia tuber powder on immune response

of broiler. Experimental animals were 160 unsex Day Old Chick (DOC) New

Lohmann strain MB 202, dahlia tuber powder, and basal diet. Basal diet were

composed of corn, wheat pollard, soybean meal, soybean, fish meal, meat and

bone meal (MBM), dicalcium phosphate (DCP), mineral mix, lysine and

methionine. The treatments applied were: P0 (basal diet without dahlia tuber

powder as a control), P1 (Basal diet + dahlia tuber powder 10 g/kg feed), P2 (Basal

diet + dahlia tuber powder 12,5 g/kg feed), and P3 (Basal diet + dahlia tuber

powder 15 g/kg feed). The parameters measured were heterophil/lymphocyte ratio

(H/L ratio), percentage of bursa fabrisius and spleen. The research was assigned

in a completely randomized design with 4 treatments and 5 replications. The data

were analyzed using ANOVA and followed by Duncan test at the level of 5%.

The results showed that feeding dahlia tuber powder to improve the immune

responses of broiler does not show the effect on the percentage weight of the

bursa fabricius, but significantly affect on H/L ratio and percentage weight of the

spleen. In conclusion, feeding dahlia tuber powder as a prebiotic to 12.5 g/kg feed

(1% inulin) can improve immune responses broiler is characterized by increased

weight bursa fabricius, decreased spleen weight and H/L ratio.

Keywords: Broiler, Dahlia Tuber, Immune Responses, Inulin, Prebiotic.

x

DAFTAR ISI

Halaman

HALAMAN JUDUL .................................................................................. i

HALAMAN PENGAJUAN ........................................................................ ii

PERNYATAAN KEASLIAN .................................................................... iii

HALAMAN PENGESAHAN ..................................................................... iv

KATA PENGANTAR ................................................................................ v

ABSTRAK ................................................................................................. viii

ABSTRACT ............................................................................................... ix

DAFTAR ISI .............................................................................................. x

DAFTAR TABEL ...................................................................................... xii

DAFTAR GAMBAR ................................................................................. xiii

DAFTAR LAMPIRAN .............................................................................. xiv

PENDAHULUAN....................................................................................... 1

TINJAUAN PUSTAKA

Gambaran Umum Bunga Dahlia (Dahlia variabilis) ........................ 4

Inulin asal Umbi Bunga Dahlia ......................................................... 6

Prebiotik ............................................................................................ 8

Inulin sebagai Prebiotik .................................................................... 9

Broiler dan Kebutuhan Nutrien ......................................................... 11

Ketahanan Tubuh Unggas ................................................................. 13

MATERI DAN METODE PENELITIAN

Waktu dan Tempat ............................................................................. 21

Materi Penelitian ................................................................................ 21

Metode Penelitian .............................................................................. 22

Analisis Data ...................................................................................... 28

xi

HASIL DAN PEMBAHASAN

Rasio H/L .......................................................................................... 29

Bursa fabricius .................................................................................. 33

Limpa ................................................................................................ 35

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan ........................................................................................ 39

Saran ................................................................................................. 39

DAFTAR PUSTAKA ................................................................................ 40

LAMPIRAN ……. ...................................................................................... 47

RIWAYAT HIDUP …… ............................................................................ 53

xii

DAFTAR TABEL

No .............................................................................................................. Halaman Halaman

Teks

1. Kandungan Nutrien Umbi Bunga Dahlia (% Berat Kering) ............... 7

2. Kebutuhan Nutrien pada Broiler .......................................................... 13

3. Komposisi Pakan Perlakuan Fase Starter (0−14 Hari)......................... 23

4. Komposisi Pakan Perlakuan Fase Finisher (15−35 Hari) .................... 24

5. Rata-rata rasio H/L, Bobot Bursa fabricius dan limpa Broiler Umur

35 Hari ................................................................................................. 29

xiii

DAFTAR GAMBAR


Teks

1. Tanaman Bunga Dahlia dan Umbi Bunga Dahlia ............................... 5

2. Heterofil ............................................................................................... 14

3. Limfiosit ............................................................................................... 16

4. Organ Limfoid ..................................................................................... 17

5. Pembuatan Preparat Ulas Darah Tipis ................................................. 27

xiv

DAFTAR LAMPIRAN


Teks

1. Perhitungan Persentase Inulin ............................................................. 47

2. Hasil Analisa Sidik Ragam ................................................................. 48

3. Dokumentasi ........................................................................................ 52

1

PENDAHULUAN

Peningkatan populasi broiler di Indonesia pada tahun 2014 sebanyak

1.344.191.104 ekor menjadi 1.443.349.118 ekor pada tahun 2015. Peningkatan

populasi sejalan dengan peningkatan produksi broiler yaitu 1.544.379 ton pada

tahun 2014 menjadi 1.627.106 ton pada tahun 2015 (Direktorat Jenderal

Peternakan dan Kesehatan Hewan, 2015). Meningkatnya populasi dan produksi

broiler setiap tahunnya menjadikan prospek peternakan broiler semakin

menjanjikan, namun mengalami kendala dengan adanya penggunaan antibiotik

sebagai feed additive dalam pakan, yang dapat memacu pertumbuhan dan

mencegah penyakit menjadi alternatif untuk meningkatkan performa produksi.

Penggunaan antibiotik mengalami penurunan dan bahkan di beberapa

negara telah melarang penggunaan antibiotik sebagai feed additive dalam pakan.

Hal ini disebabkan efek buruk yang ditimbulkan tidak hanya bagi ternak berupa

resistensi antibiotik tetapi juga bagi konsumen melalui residu yang ditinggalkan

pada produk daging. Pembatasan penggunaan antibiotik sebagai feed additive

menjadikan prebiotik sebagai bahan alternatif yang dapat digunakan

menggantikan fungsi antibiotik dalam pakan.

Prebiotik merupakan salah satu senyawa alami tanpa residu dan bersahabat

bagi kesehatan konsumen. Prebiotik adalah substrat tidak tercerna dan mempunyai

pengaruh yang menguntungkan pada inang melalui stimulasi pertumbuhan dan

aktivitas secara selektif terhadap mikroba non patogen dalam saluran pencernaan.

Inulin adalah karbohidrat yang berfungsi sebagai prebiotik. Salah satu jenis

tanaman yang banyak tumbuh di Indonesia dan mengandung inulin dalam jumlah

2

cukup tinggi adalah umbi bunga dahlia (Dahlia variabilis). Selain bunganya

indah, umbinya juga dapat dimanfaatkan sebagai sumber inulin. Di Indonesia

umbi bunga dahlia sampai saat ini belum bisa dimanfaatkan secara optimal dan

masih merupakan limbah yang dihasilkan oleh petani bunga potong. Kandungan

inulin asal umbi bunga dahlia sebesar 69,50–75,48% dari berat kering umbi

(Saryono dkk., 1998). Inulin sebagai prebiotik adalah polimer alami kelompok

karbohidrat. Inulin bersifat larut dalam air, tetapi tidak dapat dicerna oleh enzim

dalam sistem pencernaan sehingga mencapai caecum tanpa mengalami perubahan

struktur. Dengan demikian, inulin mampu mencapai caecum dan substrat dapat

difermentasi bakteri caecum.

Pemberian inulin pada level 1% memberikan efek positif pada kesehatan

broiler yang ditandai dengan peningkatan bobot bursa fabricius, sebagai indikator

dari ketahanan dan kekebalan tubuh (Nabizadeh et al., 2012). Fajrih et al. (2014)

melaporkan bahwa penggunaan tepung umbi bunga dahlia pada tingkat 1,2%

mampu meningkatkan bobot bursa fabricius dan menurunkan rasio

heterofil/limfosit (rasio H/L). Selain bobot organ limfoid, komponen darah,

seperti rasio H/L, merupakan indikator ketahanan tubuh. Rasio H/L merupakan

indikator stres pada ayam yang terkait erat dengan kinerja bursa fabricius, karena

organ ini berperan penting dalam sistem kekebalan tubuh. Inulin dikenal dapat

meningkatkan pertumbuhan bakteri asam laktat yang mengeluarkan senyawa

imunomodulator, zat yang mampu/berinteraksi dengan sistem imun baik dalam

bentuk meningkatkan atau menurunkan aspek tertentu dari respon inang

(Tzianabos, 2000).

3

Penggunaan prebiotik inulin dapat meningkatkan pertumbuhan bakteri non

patogen dan bakteri asam laktat. Kondisi ini berdampak pada perbaikan kondisi

saluran pencernaan dan ketahanan tubuh broiler akibat perubahan komposisi

bakteri non patogen, sehingga diharapkan penggunaan prebiotik inulin mampu

meningkatkan ketahanan tubuh pada broiler yang ditandai dengan peningkatan

bobot bursa fabricius, penurunan bobot limpa dan rasio H/L.

Penelitian bertujuan untuk mengevaluasi level pemberian tepung umbi

bunga dahlia terhadap ketahanan tubuh broiler. Penelitian diharapkan dapat

digunakan sebagai sumber informasi bagi masyarakat khususnya peternak unggas

mengenai level penggunaan inulin asal umbi bunga dahlia sebagai prebiotik dalam

kaitannya dengan organ ketahanan tubuh broiler.

Hipotesis penelitian adalah prebiotik inulin asal umbi bunga dahlia sebagai

feed additive mampu meningkatkan ketahanan tubuh broiler yang ditandai dengan


4

TINJAUAN PUSTAKA

Gambaran Umum Bunga Dahlia (Dahlia variabilis)

Klasifikasi botani tanaman bunga dahlia menurut Dole dan Wilkins (2005)

adalah:

Kingdom : Plantae

Divisi : Spermatophyta

Sub Divisi : Angiospermae

Kelas : Dicotyledonae

Ordo : Liliales

Famili : Compositae / Asteraceae

Genus : Dahlia

Spesies : Dahlia variabilis

Tanaman bunga dahlia merupakan tanaman hias berupa tumbuhan tahunan

yang tegak, bercabang, tidah berbulu, letak daun-daunnya tersusun bersebelahan

dan memiliki satu sampai tiga buah sirip dengan pinggiran yang bergerigi serta di

atas tangkai terdapat bunga dengan warna-warna tertentu. Tanaman ini berasal

dari pegunungan Meksiko. Di Eropa budidaya dimulai tahun 1789, dari Royal

Botanical Garden di Madrid, Spanyol dan menyebar ke seluruh Eropa Barat.

Walaupun perkembangannya sangat lambat, pada tahun 1841 sudah terdapat

1.200 varietas (Vinayandana, 1998). Gambar morfologi bunga dan umbi bunga

dahlia dapat dilihat pada Gambar 1.

5

Gambar 1. Tanaman Bunga Dahlia (atas) dan umbi bunga dahlia (bawah)

Budidaya tanaman dahlia dapat dilakukan dengan cara perbanyakan

generatif dengan benih atau perbanyakan vegetatif dengan stek dan perbanyakan

vegetatif dengan umbi. Perbanyakan dengan umbi dilakukan pada dahlia jenis

kaktus maupun semi kaktus menggunakan umbi yang berumur 7 bulan. Panen

bunga dahlia dilakukan setelah 3 bulan masa tanam dengan frekuensi 2x

seminggu sampai 4 bulan kemudian, sedangkan panen umbi dilakukan setelah 7

bulan. Produksi umbi per batang bergantung dari jenis dahlia. Dahlia kaktus

menghasilkan ubi yang besar dan dapat mencapai 2 kg/tanaman. Dalam 10

tumbak (140 m2) dihasilkan 400 kg ubi (Prihatman, 2001).

Bunga dahlia memiliki warna: putih, kuning, jingga, violet, merah, ungu

atau campurannya. Dahlia tumbuh baik pada daratan tinggi dengan ketinggian

optimum 700–1.000 m dpl (dari permukaan laut). Tanaman dahlia mampu

menghasilkan umbi sebanyak 2.800–3.500 kg/ha. Bunga dahlia banyak ditemukan

6

pada dataran tinggi di Indonesia. Selain sebagai penghasil bunga potong, dahlia

juga memiliki umbi yang mengandung inulin (Saryono dkk., 1998).

Inulin Asal Umbi Bunga Dahlia

Inulin adalah senyawa golongan polisakarida yang banyak terdapat di alam

sebagai cadangan energi berbagai jenis tanaman yang disimpan didalam akar atau

rhizobium seperti umbi tanaman bunga dahlia (Dahlia sp. L), daun Jerusalem

artichoke (Helianthus tuberosus), akar chicory (Chicoryum intybus L.), daun

dandelion (Taraxacum officinale W.), akar yacon (Smallanthus sanchifolius) dan

dalam jumlah kecil terdapat dalam bawang putih, bawang bombay, asparagus,

pisang dan gandum (Niness, 1999).

Umbi bunga dahlia merupakan salah satu sumber inulin sebagai prebiotik

yang sangat potensial, selain umbi jerusalem artichoke dan akar chicory (Franck

dan Lenheer, 2003). Bunga dahlia banyak dibudidayakan di Indonesia, selain

bunganya indah, umbinya juga dapat dimanfaatkan sebagai sumber inulin.

Kandungan inulin asal umbi bunga dahlia yang telah diekstraksi sebesar 86,5%

(Fanani, 2014).

Umbi tanaman dahlia, akar chicory, umbi Jerusalem artichoke, bawang

merah, bawang putih dan nanas merupakan tanaman dengan sumber inulin. Kadar

inulin pada tanaman Jerusalem artichoke mengandung inulin sebesar 19–25%,

Chicory 20–25%, dan bawang merah 6–12% (Franck, 2002). Kandungan nutrien

umbi bunga dahlia dapat dilihat pada Tabel 1.

7

Tabel 1. Kandungan Nutrien Umbi Bunga Dahlia (% berat kering)

Komposisi Kadar (%)

Inulin 79,58

Air 11,99

Abu 7,16

Lemak Kasar 0,19

Serat Kasar 13,22

Protein Kasar 7,00 Sumber: Agustina(2016)

Dahlia menghasilkan umbi yang mengandung 70% pati dalam bentuk inulin

(Asih dkk., 2009). Umbi bunga dahlia mengandung 69,50–75,48% inulin, yang

berpotensi untuk dihidrolisis menjadi sirup fruktosa dan fruktooligosakarida atau

sebagai substrat pada produksi alkohol secara fermentasi (Saryono dkk., 1998).

Shivayogeppa et al. (2010) juga menambahkan, bahwa dahlia merupakan tanaman

umbi yang mengandung senyawa inulin paling tinggi, mengandung fruktosa serta

mempunyai kandungan senyawa kecil yang aktif seperti phytin dan benzoate acid.

Pada dasarnya setiap sel dari tanaman dahlia mengandung pati dalam bentuk

inulin. Akar, daun dan biji mengandung sejumlah senyawa metabolit penting

seperti inulin, lakton seskuiterpen, kumarin, flavonoid dan vitamin (Ranjitha dan

Nandagopal, 2007). Tanaman ini berguna sebagai antihepatotoxic,

antiulcerogenic, antiinflamasi, memperlancar sistem pencernaan, obat perut,

depurative dan diuretik (Fatima et al., 2007).

Inulin adalah cadangan karbohidrat yang terkandung dalam umbi bunga

dahlia dengan jumlah yang tinggi dan berfungsi sebagai penggantian lemak dan

gula, memperbaiki sifat organoleptik dan tekstur, meningkatkan absorbsi mineral,

sebagai imunomodulator dan pencegahan kanker usus besar (Asih dkk., 2009).

8

Prebiotik

Bahan pakan tambahan yang dilaporkan memberikan keuntungan dalam

pemanfaatan energi dan protein untuk ternak unggas diantaranya adalah probiotik,

prebiotik dan asam organik (Yang et al., 2009). Prebiotik dapat didefinisikan

sebagai substrat atau food ingredient yang tidak dapat dicerna host tetapi

difermentasi selektif oleh beberapa mikroba usus yang menstimulasi pertumbuhan

dan aktivitas bakteri yang bermanfaat untuk hewan inang (Scholz-Ahrens et al.,

2001).

Bifidobacteria dan Lactobacilli merupakan bakteri endogen menguntungkan

yang dapat memanfaatkan prebiotik (Yang et al., 2009). Gibson et al. (2004)

menyatakan food ingredient yang diklasifikasikan sebagai prebiotik harus

memenuhi persyaratan, yaitu tahan terhadap asam saluran pencernaan, tidak

dihidrolisa dan tidak diserap di saluran pencernaan, dan tidak diekskresikan dalam

feses, dan merupakan subtrat yang selektif untuk satu atau sejumlah mikroba yang

menguntungkan dalam usus, sehingga memicu pertumbuhan bakteri dan mampu

merubah mikroba usus menjadi komposisi yang menguntungkan kesehatan.

Beberapa faktor yang mempengaruhi komposisi mikroba pada saluran pencernaan

unggas, seperti pakan, pemberian antibiotik, umur, dan infeksi yang disebabkan

oleh mikroba patogen (Lu et al., 2003).

Jenis prebiotik yang umum digunakan adalah inulin, fructo–

oligosaccharides (FOS), galacto–oligosacharides (GOS), soy-oligosaccharides,

(Roberfroid, 2007). Secara alami oligosakarida terkandung dalam jumlah sedikit

pada tanaman dan sayuran seperti bawang, rebung dan pisang. Inulin dan

9

transgalacto-oligosaccharides (TOS) dapat memenuhi kriteria prebiotik atau

food ingredient (Azhar, 2009). Hal ini karena inulin mempunyai efek prebiotik

yang menguntungkan. Cara kerja prebiotik dalam pakan adalah sebagai sumber

makanan bagi mikroba usus yang menguntungkan/non patogenik. Penambahan

prebiotik dapat meningkatkan jumlah bakteri yang menguntungkan (Roberfroid et

al., 2010).

Inulin merupakan kelompok karbohidrat yang tidak dapat dihidrolisis oleh

enzim tubuh (Niness, 1999). Meskipun demikian, inulin dapat mengalami

fermentasi akibat aktivitas mikroba yang terdapat di dalam usus, sehingga

berpengaruh positif terhadap kesehatan tubuh. Prebiotik memiliki struktur kimia

yang unik serta tahan terhadap enzim pencernaan tanpa mengalami perubahan

struktur (Jung et al., 2008).

Inulin sebagai Prebiotik

Inulin adalah monomer-monomer fruktosa yang dihubungkan oleh ß (2–1)

fruktofuranosa dan disetiap ujung rantainya terdapat glukosa. ß (2–1)

fruktofuranosa menyebabkan tidak terdegradasinya inulin terhadap enzim

pencernaan hewan inang (Duggan et al., 2002). Inulin merupakan nutrisi yang

sesuai bagi bakteri baik, sehingga dapat meningkatkan pertumbuhan dan

perkembangan bakteri yang menguntungkan dalam usus. Akibat dari pemberian

inulin terjadi peningkatan perkembangan bakteri menguntungkan dan

menurunkan bakteri patogen, sehingga kesehatan saluran pencernaan semakin

baik dan efeknya ketersediaan nutrien oleh inang pun meningkat. Enzim-enzim

yang dihasilkan saluran pencernaan merombak protein, karbohidrat dan lemak

10

menjadi produk yang dapat diserap tubuh dan dimanfaatkan untuk pertumbuhan

ataupun perkembangan jaringan baru berupa pertambahan bobot badan.

Suplementasi prebiotik secara nyata dapat meningkatkan bobot badan dan

menurunkan konversi pakan atau feed convertion ratio (FCR) serta mortalitas

broiler (El-Banna et al., 2010). Pemberian prebiotik dalam pakan dapat

menggantikan peranan antibiotik sebagai growth promotor (Daud, 2005 dan

Ashayerizadeh et al., 2009).

Prebiotik merupakan substrat selektif untuk meningkatkan pertumbuhan

mikroorganisme tertentu dalam saluran pencernaan. Mikroorganisme tersebut

merupakan bakteri asam laktat (BAL) alami dalam saluran pencernaan yang

berperan penting dalam memberikan pertahanan saluran pencernaan dengan cara

menghambat kolonisasi bakteri patogen (Gibson dan Fuller, 2000). Beberapa cara

eliminasi bakteri patogen oleh BAL antara lain dengan mengeluarkan hasil akhir

metabolik bersifat asam seperti asam laktat dan asam lemak rantai pendek atau

Short Chain Fatty Acid (SCFA) yang akan menurunkan pH lingkungan saluran

cerna, dalam suasana asam BAL dapat berkembang dengan baik sedangkan

bakteri patogen sulit berkembang. Selain itu, BAL dapat memproduksi antibiotika

alamiah, yang mempunyai kemampuan spektrum luas seperti lactocins,

helveticins, lactacins, curvacins, nisin atau bifidocin. Antimikrobial tersebut

mengeliminasi berbagai macam bakteri patogen saluran pencernaan termasuk

Salmonella, Campylobacters dan Escherichia coli (Suskovic et al., 2001).

Mikroba memainkan peranan penting bagi kesehatan melalui beberapa cara

seperti efeknya terhadap morfologi saluran pencernaan, nutrisi, dan immunitas

11

(Lu et al., 2003). Menurut Paul et al. (2007) faktor seperti bakteri patogen

memiliki efek negatif terhadap epitel usus yang mengakibatkan permeabilitas sel

mengalami perubahan sehingga memudahkan senyawa berbahaya dan bakteri

patogen menembus sel usus halus. Kondisi tersebut dapat mengganggu

penyerapan nutrien yang akan menyebabkan peradangan kronis pada mukosa

usus, sehingga akhirnya menyebabkan pertumbuhan tinggi vili terganggu.

Diantara mikroba patogen yang dapat menyebabkan penebalan pada dinding

saluran pencernaan adalah Clostridium perfringens. Dampak dari penebalan

saluran pencernaan adalah pertumbuhan ternak unggas terganggu sebagai akibat

berkurangnya jumlah nutrien yang di absorpsi (Khaksefidi dan Ghoorchi, 2006).

Gibson (2004) menyatakan bahwa keberadaan mikroba menguntungkan di

saluran pencernaan sangat penting dipertahankan karena mempunyai efek

kesehatan yang luas pada hostnya, diantaranya memperbaiki sistem imun,

mempertinggi pencernaan dan penyerapan, mensintesa vitamin dan menekan

bakteri patogen. Keseimbangan mikroba dan peningkatan performa terjadi melalui

mekanisme pH saluran pencernaan. Efek zat metabolit yang dihasilkan

berhubungan dengan pH saluran pencernaan dan aktivitas mikrobial dapat

ditemukan pada usus halus (Canibe et al., 2001).

Broiler dan Kebutuhan Nutrien

Ayam pedaging disebut juga broiler, merupakan jenis ras unggulan hasil

persilangan dari bangsa-bangsa ayam yang memiliki daya produktivitas tinggi,

terutama dalam memproduksi daging (Rasyaf, 2008). Daging broiler dipilih

sebagai salah satu alternatif, karena broiler sangat efisien dalam hal produksi.

12

Jangka waktu 6-8 minggu ayam tersebut sanggup mencapai berat hidup 1,5 − 2 kg

dan secara umum dapat memenuhi selera konsumen (Murtidjo, 2003).

Untuk keperluan hidup dan produksi, ayam membutuhkan sejumlah unsur

nutrisi yaitu protein yang mengandung asam amino seimbang dan berkualitas,

energi yang berintikan karbohidrat dan lemak, vitamin dan mineral. Semuanya

harus ada dalam pakan yang dimakan kemudian dinyatakan bahwa kandungan

nutrisi pada fase starter mengandung protein 19,5−21,2 %, energi metabolisme

2851−3180 kkal/kg pakan sedangkan finisher protein 22,0−22,7 % dan energi

metabolisme 3290−3399 kkal/kg pakan (Rasyaf, 2004).

Suprijatna dkk. (2005) menjelaskan bahwa pakan starter diberikan pada

ayam berumur 0-3 minggu, sedangkan pakan finisher diberikan pada waktu ayam

berumur empat minggu sampai panen. Kebutuhan nutrien untuk unggas

tergantung dari bangsa, umur, jenis kelamin, besar tubuh, fase produksi, kualitas

pakan, bentuk dan cara pemberian pakan, temperatur, kesehatan dan tingkah laku

sosial ternak. Kebutuhan nutrien broiler selama pemeliharaan dapat dilihat pada

Tabel 2.

13

Tabel 2. Kebutuhan Nutrien pada Broiler

Komponen

Fase Pemeliharaan

Starter Finisher

1 2* 1 2

**

Energi Metabolis (kkal/kg) 3.200 min. 2900 3200 min. 2900

Protein Kasar (%) 23 min. 19 20 min. 18

Serat Kasar (%) - maks. 6,0 - maks. 6,0

Lemak Kasar (%) - maks. 7,4 - maks. 8,0

Lisin (%) 1,10 min, 1,10 1,00 min, 0,90

Methionin (%) 0,50 min, 0,40 0,38 min, 0,30

Kalsium (Ca) (%) 0,95 0,90 – 1,20 0,90 0,90 – 1,20

Fosfor (P) (%) 0,45 min, 0,40 0,35 min, 0,40

Keterangan: 1. National Research Council (1994)

2*. Badan Standarisasi Nasional (2006)

a

2**

. Badan Standarisasi Nasional (2006)b

Ketahanan Tubuh Unggas

Rasio Heterofil / Limfosit (Rasio H/L)

Secara khusus heterofil sering disebut sebagai leukosit polimorfonuklear.

Heterofil pada ayam biasanya berbentuk bulat dengan diameter 10-15 mikron,

granula sitoplasmanya berbentuk batang pipih seperti jarum (Sturkie, 1998).

Heterofil memiliki kesamaan fungsi seperti neutrofil pada mamalia. Heterofil

(pada unggas) atau neutrofil (pada mamalia) merupakan jenis leukosit di dalam

sirkulasi darah dengan jumlah terbanyak dibandingkan dengan granulosit lainnya.

Sel ini dicirikan dengan bentuk yang cenderung bulat dengan sitoplasma berwarna

lebih muda yaitu eosinofilik. Inti kasar, tidak teratur, biasanya memiliki dua

sampai tiga lobus. Lobus pada beberapa sel terlihat tidak tersambung karena inti

tertutup granul. Granul sitoplasma pada heterofil berbentuk batang atau jarum

(Clark et al., 2009). Gambaran mengenai bentuk heterofil dapat dilihat pada

Gambar 2.

14

Gambar 2. Heterofil (Theml et al., 2004)

Fungsi utama dari heterofil adalah penghancur bahan berbagai produk

bakteri, berbagai produk yang dilepaskan oleh sel rusak dan berbagai produk

reaksi kekebalan. Heterofil bekerja secara cepat sehingga dikenal sebagai first

line defense yaitu sebagai sistem pertahanan pertama (Tizard, 1988). Masa hidup

heterofil di dalam sirkulasi lebih pendek dalam keadaan infeksi berat

dibandingkan dalam kondisi normal yakni hanya beberapa jam saja. Secara

klinis apabila jumlah heterofil muda meningkat pertanda adanya infeksi akut

(Dellman dan Brown, 1992).

Tizard (1988) menyebutkan bahwa heterofil mempunyai sifat fagositosis,

bekerja secara cepat, tetapi menjadi lelah sehingga dianggap sebagai garis

pertahanan pertama. Persentase heterofil normal pada ayam adalah 20,9% (Sturkie

dan Griminger, 1976) dan 25–30% (Swenson, 1984). Jumlah heterofil meningkat

disebabkan oleh pakan yang kekurangan riboflavin (B2) dan akibat infeksi bakteri

(leukocytosis) (Swenson, 1984).

Yalcinkaya et al. (2008) menyatakan bahwa limfosit merupakan unsur

penting dalam sistem kekebalan tubuh, yang berfungsi merespon antigen dengan

membentuk antibodi. Limfosit adalah jenis leukosit dengan jumlah paling banyak

15

dalam darah ayam (Bacha dan Bacha, 2000). Diproduksi dalam tulang belakang,

limfa, saluran limfa dan timus. Bentuk limfosit dapat dilihat pada Gambar 3.

Gambar 3. Limfosit (Theml et al., 2004)

Limfosit diproduksi dalam tulang belakang, limfa, saluran limfa, dan timus.

Fungsi utama limfosit adalah merespon adanya antigen (benda-benda asing)

dengan membentuk antibodi yang bersirkulasi di dalam darah atau dalam

pengembangan imunitas (kekebalan seluler). Apabila T–limfosit mengalami

ekspose terhadap antigen, T–limfosit akan dirangsang untuk berganda dengan

cepat dan menghasilkan lebih banyak lagi, yang dapat bekerja langsung melawan

antigen spesifik (Tizard, 1988). Persentase limfosit normal pada ayam adalah 24–

84% (Smith dan Mangkoewidjojo, 1988).

Limfosit adalah sel yang ada di dalam tubuh hewan yang mampu mengenal

dan menghancurkan determinan antigenik yang memiliki dua sifat pada respon

imun khusus, yaitu spesifitas dan memori. Limfosit memiliki beberapa subset

yang memiliki perbedaan fungsi dan jenis protein yang diproduksi, namun

morfologinya sulit dibedakan (Abbas et al., 2000).

Limfosit berperan dalam respons imun spesifik karena setiap individu

limfosit dewasa memiliki sisi ikatan khusus sebagai varian dari prototipe reseptor

16

antigen. Reseptor antigen pada limfosit B adalah bagian membran yang berikatan

dengan antibodi yang disekresikan setelah limfosit B yang mengalami diferensiasi

menjadi sel fungsional, yaitu sel plasma yang disebut juga sebagai membran

imunoglobulin. Reseptor antigen pada limfosit T bekerja mendeteksi bagian

protein asing atau patogen asing yang masuk sel inang (Janeway et al., 2001).

Rasio H/L adalah merupakan indikator stres yang utama pada unggas,

makin tinggi angka rasio tersebut maka makin tinggi pula tingkat stresnya, oleh

karena itu, kondisi stres dapat menyebabkan turunnya jumlah limfosit yang berarti

berkurang pula jumlah sel darah putih secara keseluruhan (Kusnadi, 2008).

Menurut Emadi dan Kermanshahi (2007) tingkat ketahanan tubuh pada unggas

dapat ditentukan oleh nilai rasio H/L, sekitar 0,2 (rendah), 0,5 (normal) dan 0,8

(tinggi) terhadap adaptasi lingkungan. Rasio heterofil/limfosit normal pada ayam

adalah 0,32 (Sturkie dan Griminger, 1976) dan 0,5 (Swenson, 1984).

Organ limfoid

Beberapa organ yang berperan dalam reaksi tanggap kebal antara lain timus,

bursa fabricius, dan limpa. Organ limfoid primer pada unggas terdiri dari timus

dan bursa fabricius. Kedua organ ini berfungsi mengatur produksi dan

diferensiasi limfosit (Tizard, 1988). Penyakit tertentu dan kondisi lain seperti

cekaman panas diketahui mempengaruhi perkembangan organ limfoid pada ayam

(Gregg, 2002; Kusnadi, 2008). Kondisi ini biasa disebut imunosupresi, yaitu

perubahan reaksi kekebalan kekeadaan negatif, sehingga respon tubuh ternak

terhadap masuknya benda asing menjadi berkurang, atau bisa menjadi pemicu

serangan berbagai penyakit ke dalam tubuh ternak. Imunosupresi akan

17

ditunjukkan dengan adanya tekanan, hambatan, atau gangguan pada komponen

sistem kekebalan tubuh, antara lain langsung merusak dan mengganggu

pertumbuhan organ limfoid primer (bursa dan timus), sekaligus organ limfoid

sekunder (limpa) (Gregg, 2002). Gambar morfologi organ limfoid dapat dilihat

pada Gambar 4.

Gambar 4. Organ Limfoid

1. Bursa fabricius

Sistem kekebalan tubuh mulai berkembang selama periode embrio dan

berlanjut selama minggu pertama setelah menetas. Pakan menyediakan nutrien

untuk pertumbuhan dan perkembangan organ limfoid primer dan sekunder. Sistem

kekebalan usus khususnya sistem kekebalan mukosa memerlukan pakan untuk

berkembang dengan cepat. Keterlambatan pemberian pakan setelah menetas tidak

hanya merusak pembangunan usus tetapi juga gut-associated lymphoid tissue

(GALT) seperti bursa fabricius, cecal tonsil dan Meckel divertikulum. Jadi,

keterlambatan pakan dan konsumsi air langsung menekan sistem kekebalan tubuh

(Jull-Madsen et al., 2004).

Sistem ketahanan tubuh pada unggas erat hubungannya dengan fungsi

beberapa organ limfoid salah satunya bursa fabricius. Bursa fabricius berfungsi

Bursa fabricius Limpa

18

sebagai tempat pendewasaan sel-sel dari sistem pembentuk antibodi pada ayam

yang mampu menghancurkan antigen yang masuk kedalam tubuh (Kusnadi,

2008). Organ tubuh ayam yang memegang peranan penting dalam pertahanan

tubuh ayam adalah bursa fabricius dan timus. Kedua organ ini merupakan organ

primer atau utama dalam sistem kekebalan, Bursa fabricius akan tumbuh cepat

dalam 3 minggu pertama umur ayam. Beberapa organ yang berperan dalam reaksi

tanggap kebal antara lain timus, bursa fabricius, dan limpa. Organ limfoid primer

pada unggas terdiri dari timus dan bursa fabricius. Kedua organ ini berfungsi

mengatur produksi dan diferensiasi limfosit (Tizard, 1988).

Bursa fabricius, limpa dan timus memiliki limfoid, organ yang memiliki

fungsi untuk memproduksi limfosit. Sementara itu, limfosit memiliki leukosit

yang memiliki fungsi dalam memproduksi imunoglobulin (Ig), pada ayam

terdapat tiga kelas Ig yang dapat disamakan dengan Ig mamalia yaitu IgA, IgM,

dan IgY (IgG) (Carlendar, 2002). Kusnadi dan Djulardi (2011) menyatakan

bahwa pemeliharaan broiler pada suhu yang tinggi dapat menyebabkan turunnya

bobot bursa fabricius dan meningkatkan bobot limpa. Rasio antara bobot bursa

dan limpa dapat dijadikan parameter imunosuspresi. Gambaran perubahan

patologi anatomi untuk kasus imunosupresi adalah terjadinya atrofi pada bursa

fabricius dan rasio perbandingan ukuran antara bursa fabricius dengan limpa. Bila

ukuran bursa fabricius sama atau lebih kecil dari limpa pada 5 minggu pertama

umur ayam, dapat mengindikasikan bahwa telah terjadi kasus imunosupresi.

Heckert et al. (2002) membuktikan dalam penelitiannya bahwa terjadinya

penurunan bobot bursa fabricius pada ayam broiler yang dipelihara dengan

19

kepadatan kandang yang tinggi dapat menurunkan jumlah limfosit sehingga

antibodi antara lain gama globulin yang penting dalam sistem kekebalan tubuh

menjadi rendah. Bobot relatif bursa fabricius adalah 0,22–0,26% bobot hidup

(Bahri, 2015). Tizard (1988) mengemukakan bahwa semakin sering bursa

fabricius membentuk antibodi akan menyebabkan deplesi dan pengecilan folikel

limfoid sehingga bobot relatif bursa fabricius menurun. Bobot bursa yang lebih

besar menunjukkan broiler memiliki ketahanan tubuh yang baik sehingga broiler

tahan terhadap pengaruh dari luar. Unggas yang mempunyai bobot relatif bursa

fabricius yang lebih besar berarti mempunyai ketahanan tubuh lebih baik.

2. Limpa

Limpa merupakan organ penting dalam pembentukan sel darah putih yaitu

limfosit yang ada hubungannya dengan pembentukan antibodi. Limpa bersama

sumsum tulang dan sel-sel hati berperan penting dalam degradasi eritrosit tua.

Limpa juga berfungsi sebagai penyaring darah. Limpa memiliki reaksi dengan

antigen. Antigen yang masuk secara intravena akan dijerat paling tidak sebagian,

di dalam limpa yang diambil oleh makrofag baik yang terdapat di zona pembatas

maupun yang membatasi sinusoid pulpa merah. Sel ini membawa antigen ke

folikel primer dalam pulpa putih, setelah itu sel penghasil antibodi akan

bermigrasi. Sel penghasil antibodi ini menempati zona pembatas dan pulpa merah,

dan di daerah inilah produksi antibodi ini pertama kali ditemukan. Pembentukan

pusat germinal juga terjadi dalam folikel primer dalam beberapa hari, walaupun

tidak langsung berkaitan dengan produksi antibodi. Hewan yang sudah memiliki

antibodi yang bersirkulasi, penjeratan antigen oleh sel dendrit dalam folikel

20

sekunder menjadi penting. Seperti halnya pada tanggap kebal primer, sel

penghasil antibodi berpindah dari folikel menuju ke pulpa merah dan zona

pembatas, tempat sebagian besar produksi antibodi berlangsung, walaupun

sebagian antibodi bisa juga diproduksi di dalam folikel sekunder (Tizard, 1988).

Merryana dkk. (2007), ayam yang dipapar bakteri memiliki persentase

limpa nyata lebih besar dibandingkan yang tidak terinfeksi yaitu antara 0,46–

0,54%, sementara yang tidak terinfeksi berkisar antara 0,10–0,12%. Menurut

Tang et al. (1987) organ limpa yang mengalami hipertropi karena terjadi

pengambilalihan fungsi bursa fabricius oleh limpa karena bursa fabricius yang

tidak dapat berfungsi normal. Tizard (1988) menyatakan semakin keras bursa

fabricius membentuk antibodi, menyebabkan deplesi dan folikel limfoid mengecil

sehingga berat relatif bursa fabricius menurun.

21

METODE PENELITIAN

Waktu dan Tempat

Penelitian dilaksanakan pada bulan Maret–Mei 2016. Penelitian secara in

vivo di kandang Percobaan Laboratorium Ternak Unggas, Fakultas Peternakan

Universitas Hasanuddin.Preparasi sampel darah di Laboratorium Patologi Klinik

Hewan Pendidikan, Universitas Hasanuddin. Pengujian sampel darah untuk

mengetahui rasio H/L di Laboratorium Kesehatan Hewan Sekolah Vokasi

Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta.

Materi Penelitian

Materi yang digunakan adalah Day Old Chick (DOC) strain New Lohmann

MB 202 sebanyak 160 ekor berjenis kelamin campuran (unsexed), tepung umbi

dahlia, pakan basal, air minum, vaksin gumboro, vaksin ND B1 dan vaksin ND

lasota. Inulin yang digunakan adalah tepung umbi dahlia yang sebelumnya

dianalisa kandungan inulinnya untuk menentukan dosis pemberiannya. Hasil

analisa inulin tepung umbi dahlia yaitu 79,58% per 100 g tepung umbi dahlia

(Agustina, 2016).

Kandang yang digunakan adalah kandang litter yang disekat 20 petak

dengan ukuran setiap petak 1 x 1 x 0,6 m. Setiap petak kandang dilengkapi

dengan tempat pakan, air minum dan lampu pijar 60 watt sebagai pemanas.

Perlengkapan yang digunakan adalah alat tulis, timbangan, baskom, pisau, oven,

blender atau mesin penggiling, termohigrometer, kertas koran, timbangan ukuran

20 kg, spoit 5 ml, tabung vakum yang yang berisi antikoagulan EDTA, scalpel,

dan timbangan digital dengan ketelitian 0,1 g.

22

Metode Penelitian

Rancangan Percobaan

Rancangan yang digunakan adalah rancangan acak lengkap (RAL) dengan 4

perlakuan dan 5 ulangan (@ 8 ekor) sehingga terdapat 20 unit percobaan. Broiler

dipilih sebanyak 160 ekor didasarkan pada bobot awal yang seragam dan

ditempatkan langsung pada kandang perlakuan, selanjutnya dibagi secara acak

sesuai perlakuan dengan susunan sebagai berikut :

P0 : Pakan basal

P1 : Pakan basal + Tepung umbi bunga dahlia 10 g/kg pakan (Inulin 0,8%)

P2 : Pakan basal + Tepung umbi bunga dahlia 12,5 g/kg pakan (Inulin 1%)

P3 : Pakan basal + Tepung umbi bunga dahlia 15 g/kg pakan (Inulin 1,2%)

Prosedur Penelitian

1. Pembuatan Tepung Umbi Bunga Dahlia

Penelitian akan dimulai dengan pembuatan tepung umbi bunga dahlia dengan

cara umbi bunga dahliadicuci bersih dan diiris tipis-tipis, kemudian

dikeringkan dibawah sinar matahari atau dioven pada suhu ± 60ºC selama 3

hari dengan kadar air 10–20%. Setelah kering umbi bunga dahlia dihaluskan

menjadi tepung menggunakan mesin penggiling dan siap dicampurkan dalam

pakan untuk diberikan pada broiler.

2. Penyusunan Pakan

Bahan penyusun pakan terdiri dari jagung giling, polard, bungkil kedelai,

kedelai, tepung ikan, meat and bone meal (MBM), dikalsium phospat (DCP),

mineral mix, lisin, dan methionin. Penyusunan pakan dilakukan dengan

23

menggunakan standar kebutuhan nutrisi broiler fase starter dan finisher

berdasarkan NRC (1994) dan Badan Standarisasi Nasional (2006). Susunan

dan kandungan nutrien pakan penelitian terlihat pada Tabel 3 dan 4.

Tabel 3. Komposisi Pakan Perlakuan Fase Starter (0–14 Hari).

Jenis Bahan Pakan Perlakuan

P0 P1 P2 P3

Jagung giling (%) 58 58 58 58

Polard (%) 5,50 5,50 5,50 5,50

Bungkil Kedelai (%) 13 13 13 13

Kedelai (%) 9,10 9,10 9,10 9,10

Tepung Ikan (%) 5 5 5 5

MBM (%) 9 9 9 9

DCP (%) 0,10 0,10 0,10 0,10

Mineral mix (%)* 0,10 0,10 0,10 0,10

Lisin (%) 0,10 0,10 0,10 0,10

Methionin (%) 0,10 0,10 0,10 0,10

Total (%) 100 100 100 100

Tepung Umbi bunga

Dahlia (g/kg Pakan) 0,00 10,00 12,50 15,00

Kandungan Nutrisi**

Energi Metabolis

(kkal/kg) 3004,11 3004,11 3004,11 3004,11

Protein Kasar (%) 22,28 22,28 22,28 22,28

Serat Kasar (%) 2,88 2,88 2,88 2,88

Lemak Kasar (%) 5,94 5,94 5,94 5,94

Lysine (%) 1,31 1,31 1,31 1,31

Methionine (%) 0,50 0,50 0,50 0,50

Ca (%) 1,23 1,23 1,23 1,23

P (%) 0,67 0,67 0,67 0,67 Keterangan: * Komposisi mineral mix per kilogram: Vitamin A: 1.250.000 IU, Vitamin D:

250.000 IU, Vitamin E: 750 IU, Vitamin K: 200 mg, Vitamin C: 5.000 mg, Vitamin B1: 250

mg, Vitamin B2: 400 mg, Vitamin B6: 100 mg, Vitamin B12: 1,2 mg, Biotin: 20 mg, Folic Acid:

50 mg, Nicotinic Acid: 3.000 mg, Calcium-D-pantothenate: 400 mg, Choline Chloride: 1.500

mg, Copper: 500 mg, Iron: 2.500 mg, Iodine: 20 mg, Manganese: 6.000 mg, Selenium: 20 mg,

Zinc: 7.000 mg, Cobalt: 20 mg, Zinc Bacitracin: 2.100 mg, Lysine: 13.000 mg, DL-

Methionine: 5.000 mg, Threonine: 4.000 mg, dan Antioksidan: 800 mg. ** Hasil perhitungan

berdasarkan tabel komposisi bahan pakan (Hartadi, dkk., 2005).

24

Tabel 4. Komposisi Pakan Perlakuan Fase Finisher (15–35 Hari).

Jenis Bahan Pakan Perlakuan

P0 P1 P2 P3

Jagung giling (%) 57 57 57 57

Polard (%) 12,5 12,5 12,5 12,5

Bungkil Kedelai (%) 14 14 14 14

Kedelai (%) 5 5 5 5

Tepung Ikan (%) 3 3 3 3

MBM (%) 8 8 8 8

DCP (%) 01 01 01 01

Mineral mix (%)* 0,1 0,1 0,1 0,1

Lisin (%) 0,1 0,1 0,1 0,1

Methionin (%) 0,2 0,2 0,2 0,2

Total (%) 100 100 100 100

Tepung Umbi bunga

Dahlia (g/kg Pakan) 0,00 10,00 12,50 15,00

Kandungan Nutrisi**

Energi Metabolis

(kkal/kg) 2994,9 2994,9 2994,9 2994,9

Protein Kasar (%) 20,48 20,48 20,48 20,48

Serat Kasar (%) 3,17 3,17 3,17 3,17

Lemak Kasar (%) 5,25 5,25 5,25 5,25

Lysine (%) 1,15 1,15 1,15 1,15

Methionine (%) 0,56 0,56 0,56 0,56

Ca (%) 1,05 1,05 1,05 1,05

P (%) 0,59 0,59 0,59 0,59 Keterangan: * Komposisi mineral mix per kilogram: Vitamin A: 1.250.000 IU, Vitamin D:

250.000 IU, Vitamin E: 750 IU, Vitamin K: 200 mg, Vitamin C: 5.000 mg, Vitamin B1: 250

mg, Vitamin B2: 400 mg, Vitamin B6: 100 mg, Vitamin B12: 1,2 mg, Biotin: 20 mg, Folic Acid:

50 mg, Nicotinic Acid: 3.000 mg, Calcium-D-pantothenate: 400 mg, Choline Chloride: 1.500

mg, Copper: 500 mg, Iron: 2.500 mg, Iodine: 20 mg, Manganese: 6.000 mg, Selenium: 20 mg,

Zinc: 7.000 mg, Cobalt: 20 mg, Zinc bacitracin: 2.100 mg, Lysine: 13.000 mg, DL-

Methionine: 5.000 mg, Threonine: 4.000 mg, dan Antioksidan: 800 mg. ** Hasil perhitungan

berdasarkan tabel komposisi bahan pakan (Hartadi, dkk., 2005).

3. Persiapan Penelitian

Persiapan yang dilakukan sebelum penelitian adalah pembersihan kandang,

pengapuran lantai dan dinding, fumigasi kandang menggunakan formalin 1–

2% yang dicampur air dengan dosis 1:10. Persiapan lain yang dilakukan yaitu

menebar serbuk gergaji dalam kandang yang berfungsi sebagai litter,

pemasangan sekat dan alat pemanas dengan menggunakan lampu pijar 60 watt,

25

serta pembersihan tempat makan dan air minum sebelum digunakan. Setiap

petak kandang diberi nomor perlakuan dan ulangan.

4. Pelaksanaan Penelitian

Pada saat DOC ditempatkan langsung pada petak kandang litter serta diberi air

gula untuk memenuhi kebutuhan energi yang hilang dalam perjalanan dan

empat jam kemudian diberi pakan perlakuan dan air minum. DOC ditempatkan

dalam petakan kandang litter yang dilengkapi dengan tempat makan dan

minum serta lampu pijar 60 watt masing-masing 1 buah yang berfungsi sebagai

pemanas. Pemeliharaan broiler melalui 2 tahap pemeliharaan, pertama broiler

diberikan pakan perlakuan (pakan basal untuk fase starter + inulin umbi bunga

dahlia) selama 14 hari dan pemeliharaan ke 2 yaitu umur 15 – 35 hari diberikan

pakan perlakuan (pakan basal untuk fase finisher + inulin umbi bunga dahlia).

Sebelum diberi perlakuan, broiler ditimbang untuk mendapat berat homogen.

Setiap petak kandang litter diisi dengan 8 ekor dengan penempatan perlakuan

dilakukan secara acak. Vaksinasi dilakukan sebanyak 3 kali, yaitu: Vaksinasi

ND dengan vaksin strain NDB1 melalui tetes mata pada umur 4 hari, vaksin

gumboro pada umur 14 hari melalui tetes mulut dan vaksin ND/AI pada umur

21 hari melalui injeksi (suntik). Pakan dan air minum diberikan secara ad

libitum. Vita stress diberikan sebelum dan setelah dilakukan vaksinasi untuk

mencegah stress pada broiler.

26

5. Pengambilan Sampel

Pengambilan Sampel Darah

Pada hari ke 35, pengambilan darah dilakukan melalui vena brachialispada

bagian sayap sebanyak 2–3 ml dengan spoit. Sampel darah ditampung dalam

tabung vakum yang yang berisi antikoagulan EDTA. Tabung dikocok

perlahan-lahan agar darah tidak membeku untuk segera dikirim dan diperiksa

di Laboratorium. Bagian bawah sayap, dibersihkan dengan kapas yang telah

dibasahi alkohol 70% sebelum dan sesudah pengambilan darah.

Pengambilan Sampel Organ Limfoid

Pengambilan organ limfoid dilakukan setelah pengambilan sampel darah.

Namun, sebelum itu dilakukan penimbangan bobot badan. Pemotongan

dilakukan dengan cara mengambil 1 ekor ayam dari masing-masing unit

percobaan secara acak. Total ayam yang dipotong sebanyak 20 ekor untuk

keseluruhan perlakuan. Cara pengambilan organ limfoid yaitu ayam

disembelih. Setelah mati, ayam kemudian dibedah dengan scalpel pada bagian

abdominal.Ayam yang telah dibedah kemudian diambil bursa fabricius dan

limpanya untuk ditimbang.

Parameter Pengamatan

1. Rasio H/L

Penentuan jumlah heterofil dan limfosit dihitung dari preparat ulas darah tipis.

Pembuatan preparat ulas darah (blood smear) diawali dengan meneteskan 1

tetes darah pada bagian ujung object glass dan mengambil object glass lain

yang berfungsi sebagai object glass pendorong dan ditempelkan pada tetesan

27

darah, lalu dorong ke depan dengan kemiringan 30o, maka akan didapat

preparat ulas darah yang tipis (Gambar 5). Setelah itu, difiksasi dengan

metanol, diwarnai dengan giemsa, dicuci dengan air dan dibiarkan kering pada

suhu ruang. Setelah kering diamati dibawah mikroskop dengan perbesaran 100

kali dan dihitung persentase heterofil dan limfosit yang didapat (Bain,2005).

Gambar 5 . Pembuatan preparat ulas darah tipis

Persentase heterofil dan limfosit selanjutnya dikalikan dengan jumlah Leukosit

sehingga didapatkan jumlah heterofil dan limfosit. Jumlah leukosit dihitung

melalui bilik hitung improve neubeur setelah darah diencerkan dengan larutan

Turk (Praseno et al., 2013). Penentuan rasio H/L didapat dengan membagi

jumlah heterofil dengan jumlah limfosit.

2. Bobot Organ Limfoid

Bobot organ limfoid (bursa fabricius dan limpa) diamati dengan cara organ

dipisahkan melalui proses pembedahan untuk dilakukan penimbangan.

Menurut Umam (2012) bobot organ limfoid dihitung dengan rumus :

Bobot Organ Limfoid (g)

Bobot Hidup (g)

Bobot Organ Limfoid (%) = x100 %

28

Analisis Data

Data yang diperoleh diolah dengan analisis ragam untuk mengetahui

pengaruh perlakuan terhadap peubah yang diukur. Apabila berpengaruh nyata

dilanjutkan dengan uji jarak berganda Duncan (Steel dan Torrie, 1991). Adapun

model linear untuk menjelaskan tiap nilai pengamatan yaitu:

Keterangan:

Yij = Hasil pengamatan dari perlakuan ke- i dengan ulangan ke-j

µ = Rata-rata pengamatan

τi = Pengaruh perlakuan ke – i (i = 1,2,3, 4, dan 5)

εij = Pengaruh Galat percobaan dari galat perlakuan ke–i pada

pengamatan ulangan ke–j (j = 1,2,3 dan 4), dimana:

i = Banyaknya perlakuan tepung umbi bunga dahlia.

j = Banyaknya ulangan setiap perlakuan tepung umbi bunga dahlia.

Yij = µ + τi + εij

29

HASIL DAN PEMBAHASAN

Berdasarkan hasil penelitian diperoleh rata-rata rasio H/L, bobot bursa

fabricius dan limpa broiler umur 35 hari dengan pemberian prebiotik berupa

inulin umbi bunga dahlia dengan level berbeda dapat dilihat pada Tabel. 5.

Tabel 5. Rata-rata Rasio H/L, Bobot Bursa fabricius dan Limpa Broiler Umur 35

Hari.

Parameter Perlakuan

P0 P1 P2 P3

Rasio H/L 0,63ab

0,93a

0,48b

0,77ab

Bursa Fabricius(%) 0,26 0,22 0,25 0,21

Limpa (%) 0,09a 0,08

ab 0,08

ab 0,06

b

Keterangan: P0 (Pakan Basal); P1 (Pakan basal + Tepung umbi bunga dahlia 10 g/kg pakan (0,8%

Inulin)); P2 (Pakan basal + Tepung umbi bunga dahlia 12,5 g/kg pakan (1% Inulin)); P3 (Pakan

basal + Tepung umbi bunga dahlia 15 g/kg pakan (1,2% Inulin)), ab

Superskrip pada baris yang

sama menunjukkan perbedaan nyata P<0,05.

Hasil analisis statistik (Tabel. 5) menunjukkan bahwa inulin umbi bunga

dahlia sebagai prebiotik untuk meningkatkan ketahanan tubuh broiler tidak

menunjukkan adanya pengaruh nyata terhadap bobot bursa fabricius, tetapi

berpengaruh nyata terhadap rasio H/L dan persentase bobot limpa.

Rasio H/L

Hasil analisis statistik (Tabel 5) menunjukkan bahwa pemberian tepung

umbi bunga dahlia sebagai feed additive dalam pakan broiler berpengaruh nyata

terhadap rasio H/L. Rata-rata rasio H/L perlakuan P0 (0,63) dan P3 (0,77) tidak

berbeda nyata dengan P1 (0,93) dan P2 (0,48), tetapi P1 (0,93) berbeda nyata lebih

tinggi dengan P2 (0,48). Rasio H/L dalam penelitian ini berkisar antara 0,48–0,93.

Menurut Emadi dan Kermanshahi (2007) tingkat ketahanan tubuh pada unggas

30

dapat ditentukan oleh nilai rasio H/L, sekitar 0,2 (rendah), 0,5 (normal) dan 0,8

(tinggi) terhadap adaptasi lingkungan.

Rasio H/L perlakuan P0: 0,63 dan mengalami peningkatan pada P1: 0,93,

tetapi menurun pada P2: 0,48 dan meningkat kembali pada P3: 0,77. Peningkatan

nilai rasio H/L sejalan dengan penurunan bobot bursa fabricius. Bursa dengan

ukuran besar dapat memiliki ketahanan tubuh yang baik ditandai penurunan rasio

H/L, tetapi sebaliknya peningkatan rasio H/L menunjukkan penurunan bobot

bursa. Bursa fabricius yang relatif tetap dan membesar seiring peningkatan bobot

atau umur ternak, cenderung tahan terhadap berbagai penyakit (Tizard, 1988).

Rasio H/L yang mengalami peningkatan disebabkan produksi limfosit rendah

yang ditunjukkan oleh bobot bursa yang menurun. Bobot bursa yang rendah

menunjukkan suplai limfosit dari bursa fabricius rendah. Persentase limfosit

berbanding terbalikdengan jumlah heterofil dimana tingginya persentase heterofil

diikuti oleh rendahnya rataan limfosit. Bertambahnya jumlah heterofil serta

menurunnya jumlah limfosit merupakan indikator tingginya tingkat stress

(Solihat, 2010). Siegel (1995) menjelaskan bahwa penurunan persentase bobot

bursa fabricius disebabkan oleh menurunnya sel limfosit B, sesuai tugas bursa

fabricius yaitu memproduksi dan mendewasakan sel limfosit B.

Hasil yang sama dilaporkan oleh Fajrih et al. (2014) bahwa bobot bursa

memiliki keterkaitan dengan rasio H/L. Semakin tinggi bobot bursa maka rasio

H/L akan menurun. Bobot bursa ayam lokal persilangan dengan penambahan

tepung umbi bunga dahlia sebagai sumber inulin yaitu T0 (kontrol): 0,12%, T1

(tepung umbi bunga dahlia 0,4%): 0,21%, T2 (tepung umbi bunga dahlia 0,8%):

31

0,31%, dan T3 (tepung umbi bunga dahlia 1,2%): 0,33%. Sedangkan rasio H/L

yaitu T0: 0,89, T1: 0,75, T2: 0,68, dan T3: 0,66.

Perlakuan P1 (Tepung umbi bunga dahlia10 g/kg pakan) memiliki rasio H/L

tertinggi yaitu 0,93 dan perlakuan P2 (Tepung umbi bunga dahlia12,5 g/kg pakan)

memiliki rasio H/L terendah yaitu 0,48. Perbedaan hasil yang diperoleh pada

setiap perlakuan untuk rasio H/L juga dapat disebabkan bervariasinya kandungan

inulin sebagai prebiotik dalam setiap perlakuan dan kandungan umbi bunga dahlia

tidak hanya inulin. Agustina (2016) menjelaskan bahwa kandungan umbi bunga

dahlia terdiri dari inulin (79,58%), air (11,99%), abu (7,16%), serat kasar

(13,22%), lemak kasar (0,19%) dan protein kasar (11,99%). Umbi bunga dahlia

merupakan salah satu sumber inulin sebagai prebiotik yang sangat potensial

(Franck dan Lenheer, 2003). Prebiotik merupakan substrat selektif untuk

meningkatkan pertumbuhan mikroorganisme tertentu dalam saluran pencernaan.

Mikroorganisme tersebut merupakan bakteri asam laktat (BAL) alami dalam

saluran pencernaan yang berperan penting dalam memberikan pertahanan saluran

pencernaan dengan cara menghambat kolonisasi bakteri patogen (Gibson dan

Fuller, 2000).

Pemberian tepung umbi bunga dahlia sebanyak 12,5 g/kg pakan (P2) mampu

menurunkan rasio H/L dalam darah. Hal ini disebabkan adanya kandungan inulin

dalam tepung umbi bunga dahlia yang tinggi. Meskipun, pada pemberian umbi

bunga dahlia 15 g/kg pakan (P3) rasio H/L meningkat tetapi nilai tersebut masih

dalam kisaran normal dan tidak berbeda secara statistik. Berdasarkan hasil analisa,

tepung umbi dahlia mengandung inulin sebanyak 79,58% (Agustina, 2016). Inulin

32

sebagai prebiotik mampu meningkatkan komposisi bakteri non patogen dan

bakteri asam laktat (BAL) sehingga menstimulasi pertumbuhan bakteri non

patogen, memperbaiki penyerapan nutrien dan meningkatkan ketahanan tubuh

broiler yang ditandai penurunan rasio H/L. Inulin dikenal dapat meningkatkan

pertumbuhan bakteri asam laktat yang mengeluarkan senyawa imunomodulator

yang berperan penting dalam sistem imun (Tzianabos, 2000).

Rasio H/L yang menurun disebabkan mekanisme inulin asal umbi bunga

dahlia sebagai prebiotik. Cara kerja prebiotik dalam pakan adalah sebagai sumber

makanan bagi mikroba usus yang menguntungkan/non patogenik. Menurut

Roberfroid et al. (2010) penambahan prebiotik dapat meningkatkan jumlah

bakteri yang menguntungkan. Inulin merupakan kelompok karbohidrat yang tidak

dapat dihidrolisis oleh enzim tubuh (Niness, 1999). Meskipun demikian, inulin

dapat mengalami fermentasi akibat aktivitas mikroba yang terdapat di dalam usus,

sehingga berpengaruh positif terhadap kesehatan tubuh. Prebiotik memiliki

struktur kimia yang unik serta tahan terhadap enzim pencernaan tanpa mengalami

perubahan struktur (Jung et al., 2008).

Pemberian tepung umbi bunga dahlia sebanyak 10 g/kg pakan (0,8% inulin)

belum mampu meningkatkan ketahanan tubuh sehingga ayam rentan mengalami

stress dan berakibat pada peningkatan heterofil dan penurunan jumlah limfosit.

Peningkatan heterofil seiring dengan peningkatan rasio H/L. Yalcinkaya et al.

(2008), menyatakan bahwa limfosit merupakan unsur penting dalam sistem

kekebalan tubuh, yang berfungsi merespon antigen dengan membentuk antibodi.

Menurut Tizard (1988) fungsi utama dari heterofil adalah penghancur bahan

33

berbagai produk bakteri, berbagai produk yang dilepaskan oleh sel rusak dan

berbagai produk reaksi kekebalan. Heterofil bekerja secara cepat sehingga dikenal

sebagai first line defense yaitu sebagai sistem pertahanan pertama. Secara klinis

apabila jumlah heterofil muda meningkat pertanda adanya infeksi akut (Dellman

dan Brown 1992). Menurut Kusnadi (2008) rasio heterofil dan limfosit (H/L)

adalah merupakan indikator ketidaknyamanan pada unggas, makin tinggi angka

rasio tersebut maka makin tinggi pula tingkat ketidaknyamanan. Oleh karena itu,

kondisi yang kurang menguntungkan dapat menyebabkan turunnya jumlah

limfosit yang berarti berkurang pula jumlah sel darah putih secara keseluruhan.

Bursa Fabricius

Analisis statistik (Tabel 5) menunjukkan penggunaan tepung umbi bunga

dahlia hingga 15 g/kg pakan (1,2% inulin) sebagai feed additive dalam pakan

tidak memberikan pengaruh terhadap peningkatan bobot relatif bursa fabricius.

Rataan bobot relatif Bursa fabricius setiap perlakuan berada pada kisaran 0,21–

0,26% yang masih berada pada kisaran normal. Hal ini sesuai pernyataan Bahri

(2015) bahwa pesentase bobot bursa fabricius normal pada broiler umur 35 hari

adalah 0,22–0,26% dari bobot hidup ayam.

Pemberian tepung umbi bunga dahlia hingga 15 g/kg pakan (1,2% inulin)

tidak mempengaruhi bobot relatif bursa fabricius broiler umur 35 Hari. Namun,

bobot relatif bursa fabricius masih dalam kisaran normal. Bobot relatif bursa

pada perlakuan P0 memiliki nilai tertinggi yaitu 0,26%. Sedangkan pada perlakuan

pemberian inulin tepung umbi bunga dahlia (P1, P2, dan P3) bobot relatif bursa

fabricius menurun. Hal ini kemungkinan disebabkan bobot bursa broiler umur 35

34

hari relatif tetap karena dipengaruhi oleh umur dan tahapan pertumbuhan bursa,

sehingga meski diberi inulin tidak memberi pengaruh terhadap peningkatan bobot

bursa. Menurut Tizard (1988), bursa fabricius akan tumbuh cepat dalam 3 minggu

pertama umur ayam. Bursa yang relatif tetap dan membesar seiring peningkatan

bobot atau umur ternak, cenderung tahan terhadap berbagai penyakit. Proses

pertumbuhan bursa fabricius dibagi atas 3 tahapan yaitu pertumbuhan cepat yaitu

dari menetas sampai empat minggu, tahap kedua yaitu fase plateu pada umur 5-6

minggu, dan fase regresi yang berlangsung pada umur selanjutnya (Glick, 2000).

Kusnadi dan Djulardi (2011) menyatakan bahwa bila ukuran bursa fabricius

sama atau lebih kecil dari limpa pada 5 minggu pertama umur ayam,

mengindikasikan bahwa telah terjadi kasus imunosupresi.

Pemberian tepung umbi bunga dahlia tidak berbeda diantara perlakuan

karena bursa fabricius merupakan komponen kekebalan humoral yang hanya

bereaksi ketika terjadi infeksi bakteri. Pada penelitian ini tidak terjadi infeksi yang

disebabkan oleh bakteri yang dapat berakibat pada kematian, hal ini didukung

oleh tidak adanya angka kematian akibat penyakit selama pemeliharaan broiler

atau angka mortalitas 0%. Menurut Leeson dan Summers (2000), imunitas

humoral (bursa) adalah pertahanan utama melawan bakteri, sementara kekebalan

seluler menjalankan fungsinya dalam melawan virus. North dan Bell (1990)

menjelaskan bahwa pemeliharaan ayam broilerdinyatakan berhasil jika angka

kematian secara keseluruhan kurang dari 5%. Faktor-faktor yang mempengaruhi

persentase kematian antara lain adalah bobot badan, strain, tipe ayam, iklim,

35

kebersihan lingkungan dan penyakit. Faktor penyakit sangat dominan sebagai

penyebab kematian utama peternakan ayam broiler (Sugiarto, 2008).

Limpa

Hasil analisis statistik (Tabel 5) menunjukkan bahwa pemberian tepung

umbi bunga dahlia sebagai feed additive dalam pakan broiler berpengaruh nyata

terhadap bobot limpa. Perlakuan P0 (0,09%) tidak berbeda dengan perlakuan P1

(0,08%) dan P2 (0,08%), tetapi berbeda nyata lebih tinggi dibanding P3 (0,06%).

Bobot limpa perlakuan berkisar antara 0,06–0,09% dari bobot hidup ayam. Bobot

limpa normal pada broiler berkisar antara 0,10–0,12% (Merryana, dkk., 2007).

Inulin sebagai feed additive dalam pakan mampu menurunkan bobot limpa

(P3: 0,06%). Bobot relatif limpa menurun disebabkan limpa tidak bekerja secara

maksimal untuk menghasilkan limfosit. Hal ini didukung bobot relatif bursa

fabricius berada pada kisaran normal yaitu 0,21–0,26%. Perlakuan pemberian

inulin umbi bunga dahlia mampu memperbaiki imunitas tubuh sehingga makrofag

berfungsi dengan baik dan mampu membunuh antigen sebelum sampai ke aliran

darah. Akibatnya berimbas pada berkurangnya antigen yang dapat mengurangi

kerja limpa sehingga ukuran limpa dalam batas normal. Merryana dkk. (2007)

menemukan bahwa pembesaran limpa pada broiler yang terinfeksi bakteri karena

secara tidak langsung limpa berperan dalam fungsi daya tahan tubuh dengan cara

memproduksi limfosit. Menurut Tang et al. (1987) organ limpa yang mengalami

hipertropi terjadi akibat pengambilalihan fungsi bursa fabricius oleh limpa karena

bursa fabricius yang tidak dapat berfungsi secara normal. Tizard (1988)

menyatakan semakin keras bursa fabricius membentuk antibodi, menyebabkan

36

deplesi dan folikel limfoid mengecil sehingga berat relatif bursa fabricius

menurun.

Perlakuan tanpa pemberian tepung umbi bunga dahlia (P0) menghasilkan

bobot limpa tertinggi yaitu 0,09%. Hal ini disebabkan tidak adanya kandungan

inulin dalam pakan perlakuan. Pemberian tepung umbi bunga dahlia sebagai

sumber inulin mampu memperbaiki ketahanan tubuh, dengan meningkatnya

ketahanan tubuh maka bobot limpa akan menurun. Namun, jika ketahanan tubuh

menurun maka bobot limpa akan meningkat. Bobot limpa yang meningkat terjadi

karena banyaknya antigen yang diambil dari aliran darah untuk dimusnahkan

dalam limpa sehingga meningkatkan kerja limpa dan membuat ukurannya

bertambah. Seperti yang dikemukakan Baratawidjaya dan Rengganis (2009)

bahwa limpa merupakan tempat utama fagosit memakan mikroba yang diikat

antibodi. Mikroba dalam darah dibersihkan makrofag dalam limpa. Jadi, limpa

merupakan tempat respon imun utama yang dapat menyaring antigen asal darah.

Pemberian tepung umbi bunga dahlia sebanyak 15 g/kg pakan (1,2% inulin)

berpengaruh terhadap penurunan bobot relatif limpa. Hal ini disebabkan peran

inulin sebagai prebiotik yang dapat memperbaiki kecernaan nutrien dalam saluran

pencernaan, sehingga berdampak pada ketahanan tubuh broiler melalui perbaikan

kesehatan saluran pencernaan. Kondisi saluran pencernaan yang baik akan

meningkatkan ketahanan tubuh broiler. Menurut Fanani (2014) pemberian tepung

umbi bunga dahlia mampu memperbaiki kecernaan nutrien, terutama protein.

Kecernaan protein ayam lokal persilangan dengan penambahan tepung umbi

bunga dahlia sebagai sumber inulin yaitu T0 (kontrol): 66,22%, T1 (tepung umbi

37

bunga dahlia 0,4%): 74,99%, T2 (tepung umbi bunga dahlia 0,8%): 76,84%, dan

T3 (tepung umbi bunga dahlia 1,2%): 79,51%. Kecernaan protein sangat erat

hubungannya dengan kesehatan saluran pencernaan akibat pemberian inulin yang

dapat dimanfaatkan bakteri asam laktat (BAL) yang menghasilkan SCFA sebagai

produk akhir. Produksi SCFA oleh BAL menyebabkan kondisi usus menjadi

asam, sehingga mendukung aktivitas BAL untuk tumbuh dan berkembang, serta

menyebabkan aktivitas bakteri patogen menjadi terhambat. Keadaan ini

menguntungkan bagi kesehatan saluran pencernaan inang yang pada akhirnya

meningkatkan kecernaan protein. Hasil berbeda dilaporkan Nesmawati (data

belum dipublikasi) yaitu pemberian inulin asal tepung umbi bunga dahlia tidak

berpengaruh secara statistik terhadap kecernaan protein. Kecernaan protein yang

diperoleh yaitu P0: 63,75%, P1: 63,95%, P2: 58,83%, dan P3: 62,78%.

Faktor lain yang menjadi penyebab pemberian inulin umbi bunga dahlia

sebagai prebiotik berpengaruh terhadap ketahanan tubuh broiler yaitu mikroba

non patogen saluran pencernaan memanfaatkan inulin menghasilkan SCFA yang

menyebabkan kondisi saluran pencernaan menjadi asam ditandai dengan

penurunan pH digesta, sehingga pertumbuhan mikroba patogen menjadi

terhambat. Krismiyanto dkk. (2015) melaporkan bahwa penambahan inulin dari

umbi bunga dahlia pada ayam lokal persilangan menghasilkan pH digesta caecum

T0 (kontrol): 8,00, T1 (tepung umbi bunga dahlia 0,4%): 7,40, T2 (tepung umbi

bunga dahlia 0,8%): 6,43, dan T3 (tepung umbi bunga dahlia 1,2%): 6,90.

Menurut Krismiyanto (2015), semakin meningkat populasi BAL dalam

melakukan proses fermentasi, maka nilai pH hasil fermentasi menurun.

38

Peningkatan populasi BAL menghasilkan lebih banyak enzim untuk mendegradasi

senyawa polisakarida menjadi bentuk monomer yang lebih sederhana. Selama

proses fermentasi inulin didalam usus halus, proses depolimerisasi senyawa inulin

menghasilkan molekul hidrogen. Hidrogen bebas berikatan satu sama lain dan

akumulasi molekul hidrogen memberikan kontribusi langsung pada nilai pH.

Semakin baik proses fermentasi substrat inulin berlangsung, molekul hidrogen

yang dihasilkan semakin banyak dan pH semakin rendah (Gulfi et al., 2004).

Hasil berbeda ditunjukkan Akbar (data belum dipublikasi) bahwa pemberian

tepung umbi bunga dahlia sebagai sumber inulin tidak berpengaruh secara statistik

terhadap pH caecum. Namun, mampu menurunkan pH caecum dengan level

pemberian 1,2% inulin tepung umbi bunga dahlia. pH caecum yang diperoleh

yaitu P0: 4,95, P1: 5,06, P2: 5,20, dan P3: 4,89. Menurut Guilloteau et al. (2010)

pemanfaatan prebiotik oleh BAL menghasilkan SCFA, sehingga menyebabkan

kondisi asam dalam saluran pencernaan yang dapat dilihat dari penurunan pH,

akibatnya dapat menekan pertumbuhan bakteri patogen.

39

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan

Berdasarkan hasil penelitian yang telah dilakukan dapat disimpulkan

bahwa pemberian tepung umbi bunga dahlia sebagai prebiotik sebanyak 12,5 g/kg

pakan (1% inulin), mampu memperbaiki ketahanan tubuh broiler ditandai dengan


Saran

Penelitian pemberian inulin sebagai feed additive dalam pakan broiler

sebaiknya pakan perlakuan dibuat dalam bentuk pellet, untuk mengurangi resiko

inulin yang tidak terkonsumsi.

40

DAFTAR PUSTAKA

Abbas A.K., A.H. Lichtman and J.S. Pober. 2000. Celluler and Molecular

Immunologi. 4th

Ed. W.B. Saunders Company. Harcourt Health Science

Company, Philadelphia.

Agustina, L. 2016. Kajian Manfaat Umbi dahlia (Dahlia pinnata) sebagai

prebiotik. Laporan Penelitian Mandiri.

Ashayerizadeh, O., B. Dastar, M.S. Shargh, E. Rahmatnejad and A.

Ashayerizadeh. 2009. Influence of prebiotic and two herbal additives on

interior organs dan hematological indices of broilers. J. Anim. Vet. Adv. 8

(9): 1851–1855.

Asih, S., Fatmawati, dan I. Puspitasari. 2009. Pemanfaatan Aspergillus clavatus

padaproduksi Fruktooligosakarida (FOS) dari umbi dahlia sebagai

sumberprebiotik susu formula balita. Program Kreativitas Mahasiswa.

Institut Pertanian Bogor, Bogor.

Azhar, M. 2009. Inulin sebagai prebiotik. J. Sainstek. 12 (1): 23–26.

Bacha L.M and W.J Bacha. 2000. Color Atlas of Veterinary Histology. 2nd

Ed.

Lippincot Williams and Wilkins, Newyork.

Badan Standarisasi Nasional (BSN). 2006a. Pakan anak ayam ras pedaging (ayam

broiler starter). Standar Nasional Indonesia (SNI) 01-3930-2006.

Badan Standarisasi Nasional (BSN). 2006b. Pakan anak ayam ras pedaging (ayam

broiler grower). Standar Nasional Indonesia (SNI) 01-3931-2006.

Bahri, R. 2015. Bobot dan Gambaran Histopatologis Bursa fabricius Broiler yang

Diinfeksi Escherichia coli dan Diberikan Ekstrak Daun Kemangi (Ocimum

basilicum). Skripsi. Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Syiah Kuala,

Banda Aceh.

Bain, B.J. 2005. Current concepts: Diagnosis from the blood smear. J. N. Engl.

Med. 353: 498–507.

Baratawidjaya, K. G. dan I. Rengganis. 2009. Imunologi Dasar. Ed.8. Fakultas

Kedokteran Universitas Indonesia, Jakarta.

Canibe, N., S.H. Steinen, M. Overland and B.B. Jensen. 2001. Effect of K-

diformat in starter diets on acidity, microbiota and the amount of organic

acid in the digestive tract of piglets and on gastric alterations. J. Anim. Sci.

79: 2123–2133.

41

Carlender, D. 2002. Avian IgY Antibody in vitro and in vivo. Dissertation. Acta

University Upsalienis, Upsalla.

Clark P, Boardman W, dan Raidal SR. 2009. Atlas of Clinical Avian

Hematology.Wiley-Blackwell. 3rd

Ed. USA.

Daud, M. 2005. Performan ayam pedaging yang diberi probiotik dan prebiotik

dalam ransum. J. Ilmu Ternak. 5 (2) : 75–79.

Dellman, H.D., dan E.M. Brown. 1992. Buku Teks Histologi Veteriner 3.

Universitas Indonesia Press, Jakarta.

Direktorat Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan. 2015. Populasi dan

Produksi Ayam Ras Pedaging di Indonesia Tahun 2011–2015. Direktorat

Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan Kementerian Pertanian.

Jakarta.

Dole, J.M. and Wilkins, H.F. 2005. Floriculture: Principles dan Spesies. 2nd

Ed.

Pearson dan Prentice Hall, New Jersey.

Duggan, C., J. Gannon and W.A. Walker. 2002. Protective nutriens and functional

foods for the gastrointestinal tract. Am. J. Cli. Nutr. 75 (5) : 789–808.

El-Banna, H.A., H.Y. El-Zorba, T.A. Attia and A.A. Elatif. 2010. Effect of

probiotic, prebiotic and synbiotic on broiler performance. World Appl. Sci.

J. 11 (4): 388–393.

Emadi, M and H. Kermanshahi. 2007. Effect ot Turmeric rhizome powder on the

activity of some blood enzymes in broiler chickens. Int. J. Poult. Sci. 6 (1):

48–51.

Fajrih, N., N. Suthama, and V.D. Yunianto. 2014. Body resistance and productive

performances of crossbred local chicken fed inulin of Dahlia tubers. J. Med.

Pet. 37(2): 108–114.

Fanani, A. F. 2014. Pemberian Umbi Bunga Dahlia (Dahlia variabilis) sebagai

Sumber Inulin terhadap Kecernaan Protein dan Produktivitas pada Ayam

Lokal Persilangan. Tesis. Magister IlmuTernak Fakultas Peternakan dan

Pertanian. Universitas Diponegoro, Semarang.

Fatima, B., M. Usman, Ashraf, R.T. Waseem and M.A. Ali. 2007. In vitro shoot

regeneration from cotyledon and hypocotyl explants of dahlia cultivars. J.

Agri. Sci. 44(2): 312–316.

Franck, A. 2002. Technological functionality of inulin and oligofructose. Br. J.

Nutr. 87 (2): 287–291.

42

Franck, A and L.D. Leenheer. 2003. Inulin. 4th

ORAFTI Research Conference.

Tienen, Belgium.

Gibson, G.R. and R. Fuller. 2000. Aspects of in vitro and in vivo research

approaches directed toward identifying probiotics and prebiotics for human

use. J. Nutr. 130: 391–395.

Gibson, G.R., H.M. Probert, J.V. Loo, R.A. Rastall, and M.B. Roberfroid. 2004.

Dietary modulation of the human colonic microbiota: Updating the concept

of prebiotics. Nutr. Res. Rev. 17: 259–275.

Gibson, G.R. 2004. Recent Advances in Prebiotics Use in Human. European

Nutrition Research, Italy.

Glick B. 2000. Immunophysiology.In: Whittow G.C. (Ed.). Sturkie’s Avian

Physiology. 5th

Ed. Academic Press, London .

Gregg, J.C. 2002. Immunity Commercial Chicken Meat and Egg Production. 5th

Ed. Springer Science and Business Media, New York.

Guilloteau P., L. Martin, V. Eeckhaut, R. Ducatelle, R. Zabielski, and F. Van

Immerseel. 2010. From the gut to the peripheral tissues: the multiple effects

of butyrate. Nutr. Res. Rev. 23: 366–384.

Gulfi, M., Arrigoni and R.E. Armando. 2004. Influence of structure on in vitro

fermentability of comercial pektin and partially hydrolised pectin

preparation. J. Charbohydrate Polimers. 56: 247–255.

Hartadi, H., S. Reksohadiprodjo dan A.D. Tillman. 2005. Tabel Komposisi Pakan

untuk Indonesia. Universitas Gadjah Mada Press, Yogyakarta.

Heckert, R.A., I. Estevez, E.R. Cohen and R.P. Riley. 2002. Effects of density and

perch availability on the immune status of broilers. J. Poult. Sci. 81: 451–

457.

Janeway, C. A., T. Paul, W. Mark and J. S. Mark. 2001. Immuno Biology. 5th

Ed.

Garland Publishing, New York.

Jull-Madsen, H. R., G. Su and P. Sorensen. 2004. Influence of early or late start of

first feeding on growth and immune phenotype of broilers. Br. Poult. Sci.

45: 210–222.

43

Jung S. J., R. Houde, B. Baurhoo, X. Zhao, and B.H. Lee. 2008. Effects of

galacto-oligosaccharides and a bifdobacteria lactis-based probiotic strain

on the growth performance dan fecal microflora of broiler chickens. J.

Poult. Sci. 87: 1694–1699.

Khaksefidi, A., and T. Ghoorchi. 2006. Effect of probioticon performance and

immunocompetence in broiler chicks. J. Poult. Sci. 43: 296–300.

Krismiyanto, L. 2015. Penambahan Inulin dari Umbi Dahlia (Dahlia variabilis)

terhadap Perkembangan Bakteri Usus Halus dan Produktivitas Ayam

Kampung Persilangan. Tesis. Magister Ilmu Ternak Fakultas Peternakan

dan Pertanian. Universitas Diponegoro, Semarang.

Krismiyanto, L., N. Suthama., dan H.I. Wahyuni. 2015. Keberadaan bakteri dan

perkembangan caecum akibat penambahan inulin dari umbi dahlia (Dahlia

variabilis) pada ayam kampung persilangan periode starter. JIIP. 24 (3):

54–60.

Kusnadi, E. 2008. Perubahan malonaldehida hati, bobot relatif Bursa fabricius

dan rasio heterofil/limfosit (H/L) ayam broiler yang diberi cekaman panas.

Skripsi. Fakultas Peternakan Universitas Andalas, Padang.

Kusnadi E. and A. Djulardi. 2011. Physiological dynamic of broiler at various

environmental temperatures. Int. J. Poult. Sci. 10: 19–22.

Leeson, S. and J.D. Summers. 2000. Broiler Breeder Production. University

Books, Canada.

Lu J., U. Idris, C. Hofacre, J.J. Maurer, M.D. Lee, and B. Harmon. 2003.

Diversity and succession of the intestinal bacterial community of the

maturing broiler chicken. Appl. Environ. Microbiol. 69: 6816–6824.

Merryana F.O., Nahrowi, M. Ridla, A. Setiyono, dan R. Ridwan. 2007. Performan

broiler yang diberi pakan silase dan ditantang Salmonella typhimurium.

Prosiding Seminar Nasional AINI VI. Yogyakarta, 26-27 Juli 2007. Hal.

186-194.

Murtidjo, B. A. 2003. Pedoman Meramu Pakan Unggas. Kanisius, Yogyakarta.

Nabizadeh, A., O. Gevorkyan and A. Golian. 2012. Effect inulin on some

hematological, imunological parameters and broiler chicken performance. J.

Anim. Vet. Adv. 11: 3304–3311.

National Research Council. 1994. Nutrient Requirements of Poultry. 9th

Rev. Ed.

National Academy Press, Washington DC.

44

Niness, K.R. 1999. Inulin dan oligofructose. J. Am. Societ. Nutr. Sci. 129: 1402–

1406.

North, M.O. and D. Bell. 1990. Commercial Chicken Production Manual. 4th

Ed.

Chapman and Hall, London.

Paul, S. K., G. Halder, M.K. Mondal and G. Samanta. 2007. Effect of organic acid

salt on the performance and gut health of broiler. Poult. Sci. 44: 389–395.

Praseno, K., E.Y.W. Yuniwarti, Kasiyati. 2013.Petunjuk Praktikum Fisiologi

Hewan. Fakultas Sains dan Matematika. Universitas Diponegoro, Semarang.

Prihatman,K. 2001. Dahlia. www.warintek.ristek.go.id/ Diakses pada Tanggal 08

Desember 2015.

Ranjitha, B.D., and S. Nandagopal. 2007. Effectiveness of auxin induced in vitro

root culture in Chicory. J. Centr Eur.Agric. 8: 73–80.

Rasyaf, M. 2004. 6 Kunci Sukses Beternak Ayam Kampung. Penebar Swadaya,

Jakarta.

Rasyaf, M. 2008. Beternak Ayam Pedaging. Penebar Swadaya, Jakarta.

Roberfroid, M. B. 2007. Prebiotics: The concept revisited. J. Nut. 137: 830–837.

Roberfroid, M., G.R. Gibson, L. Hoyles, A.L. McCartney, R. Rastall, I. Rowland,

D. Wolvers, B. Watzl, H. Szajewska, B. Stahl, F. Guarner, F. Respondek, K.

Whelan, V. Coxam, M.-J. Davicco, L. Léotoing, Y. Wittrant, N.M.

Delzenne, P.D. Cani, A.M. Neyrinck and A. Meheust. 2010. Prebiotic

effects: metabolic and health benefits. Br. J. Nutr. 104 (2): 51–63.

Saryono, Chainulfiffah, S. Devi, Monalisa, dan Dasli. 1998. Pemanfaatan umbi

Dahlia variabilis untuk produksi sirup fruktosadan fruktooligosarida (FOS).

Seminar Nasional PBBMI XIV, Bandung.

Scholz-Ahrens, K.E. Schaafsma, G. E.G.H.M. Heuvel and J. Schrezenmeir. 2001.

Effect of prebiotics on mineral metabolism. Am. J. Clin. Nutr. 73 (2): 4592–

4605.

Shivayogeppa, J,. Adiga Dinakara, Prabhuling G., Reddy B.S., Natraj S.K. dan

Prashanth S.J. 2010. In vitro conservation studies in dahlia (Dahlia

variabilis L.). Research Paper The Asian Journal of Horticulture. 4 (2):

470–472.

Siegel, H.S. 1995. Stress, strain, and resistence. Brit. Poult. Sci 36: 3−22.

45

Smith, J.B dan S. Mangkoewidjojo. 1988. Pemeliharaan, Pembiakan dan

Penggunaan Hewan Percobaan di Daerah Tropis. Penerbit Universitas

Indonesia. Jakarta.

Solihat, S.R. 2010. Gambaran Darah, Bursa Fabricius, Timus dan Populasi

Mikroba Sekum Ayam Broiler yang Diberi Prebiotik (Xilooligosakarida)

dariTongkol Jagung. Skiripsi. Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor,

Bogor.

Steel, R.G.D. dan J.H. Torrie. 1991. Prinsip dan Prosedur Statistika Suatu

Pendekatan Biometrik(Terjemahan: Bambang Sumantri). PT. Gramedia,

Jakarta.

Sturkie, P. D. and P. Griminger. 1976. Blood : physical characteristics, formed

elements, hemoglobin and coagulation. Dalam:Sturkie, P. D. (Editor). Avian

Physiology. 3rd

Ed. Springer-Verlag, New York.

Sturkie, P.D. 1998. Avian Physiology. 5th

Ed. Spinger Verleg, New York.

Sugiarto, B. 2008. Performa Ayam Broiler dengan Pakan Komersial yang

Mengandung Tepung Kemangi (Ocimum basilicum). Skripsi. Fakultas

Peternakan. Institut Pertanian Bogor, Bogor.

Suprijatna, E., U. Atmomarsono dan R. Kartasudjana. 2005. Ilmu Dasar Ternak

Unggas. Penebar Swadaya, Jakarta.

Suskovic, J., B. Kos, J. Goreta, and S. Matosic. 2001. Role of Lactic Acid

Bacteria and Bifidobacteria in Symbiotic Effect. J. Food Technol.

Biotechnol. 39 (3): 227–235.

Swenson, M. J. 1984. Duke`s Physiology of Domestic Animals. 10th

Ed.

Publishing Assocattes a Division of Cornell University, Ithaca and London.

Tang, K.N., O.J. Fletcher, and P. Villegas. 1987. Comparative study of the

pathogenicity of avian reoviruses. J. Avian Diseases. 31(3): 577–583.

Theml H, H. Diem, and T. Haferlach. 2004. Color Atlas of Hematology. 2nd

Rev.

Ed. Thieme, New York.

Tizard, I. 1988. Pengantar Imunologi Veteriner. Airlangga University Press,

Surabaya.

Tzianabos, A.O.2000. Polysaccharides immunomodulatory as therapeutic agents:

structural aspect and biological function. Clin. Microbiol. Rev. 523–533.

46

Umam, A.A.C. 2012. Hematologi, malondealdehida plasma darah, danbobot

organ limfoid broiler yang diberi ransumMengandung biji ketumbar

(coriandrum sativum l.). Skripsi. Fakultas PeternakanInstitut Pertanian

Bogor, Bogor.

Vinayandana, S. 1998. Flowerbad dahlias. Indian Dahlia Annual. 1(2): 22–24.

Yalcinkaya, L., T. M. Gonggor, Basalan and E. Erdem. 2008. Mannan

oligosaccharides (MOS) from Saccharomyces cerevisiae in broilers: Effects

on performance and blood biochemistry. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 32(1) :

43–48.

Yang, Y., P.A. Iji and M. Choct. 2009. Dietary modulation of gut microflora in

broiler chickens: a review of the role of six kinds of alternatives to in-feed

antibiotics. J. World Poult. Sci. 65 (2): 345–351.

47

Lampiran 1. Perhitungan Persentase Inulin

100 Tepung Umbi Bunga Dahlia (TUBD) mengandung= 79,58% (79,58 g) inulin

Inulin TUBD.

1. Inulin TUBD = 79,58

100 × 1 g

= 0,8 g/1g TUBD

*Artinya: Setiap 0,8 g inulin terkandung dalam 1 g TUBD atau 0,8% (0,8/100

x 100= 0,8%) Inulin setara dengan 1% (1/100 x 100= 1%) TUBD.


100 × 1,25 g

= 1 g/1,25g TUBD

*Artinya: Setiap 1 g inulin terkandung dalam 1,25 g TUBD atau 1% (1/100 x

100= 1%) Inulin setara dengan 1,25% (1,25/100 x 100= 1,25%)

TUBD.


100 × 1,5 g

= 1,2 g/1,5 g TUBD

*Artinya: Setiap 1,2 g inulin terkandung dalam 1,5 g TUBD atau 1,2%

(1,2/100 x 100= 1,2%) Inulin setara dengan 1% (1/100 x 100= 1%)

TUBD.

Tepung umbi bunga dahlia.

1. Tepung umbi bunga dahlia = 100 gr

79,58 gr × 0,8 g

= 1 g → 1g/100 g pakan (10 g/kg pakan)

2. Tepung umbi bunga dahlia = 100

79,58 × 1 g

= 1,25 g → 1,25 g/100 g pakan (12,5 g/kg pakan)

3. Tepung umbi bunga dahlia = 100

79,58 × 1,2 g

= 1,5 g → 1,5 g/100 g pakan (15 g/kg pakan)

48

Lampiran 2. Hasil Analisa Sidik Ragam

ONEWAY Rasio_HL Bursa Limpa BY Inulin

/POLYNOMIAL=1

/STATISTICS DESCRIPTIVES EFFECTS HOMOGENEITY

/MISSING ANALYSIS

/POSTHOC=DUNCAN LSD ALPHA(0.05).

Oneway

DataSet1] E:\DEWI\Hasil\Data % limfoid.sav

Descriptives

N Mean

Std.

Deviation Std. Error

95% Confidence

Interval for Mean

Minimum Maximum

Lower

Bound

Upper

Bound

Rasio_HL P0 5 .6340 .23797 .10642 .3385 .9295 .33 .88

P1 5 .9320 .48427 .21657 .3307 1.5333 .38 1.56

P2 5 .4860 .24429 .10925 .1827 .7893 .25 .81

P3 5 .7740 .25393 .11356 .4587 1.0893 .52 1.13

Total 20 .7065 .34087 .07622 .5470 .8660 .25 1.56

Bursa P0 5 .2600 .07450 .03332 .1675 .3525 .19 .34

P1 5 .2240 .05683 .02542 .1534 .2946 .14 .29

P2 5 .2520 .07981 .03569 .1529 .3511 .15 .37

P3 5 .2160 .03647 .01631 .1707 .2613 .19 .28

Total 20 .2380 .06187 .01383 .2090 .2670 .14 .37

Limpa P0 5 .0960 .01517 .00678 .0772 .1148 .08 .11

P1 5 .0800 .01732 .00775 .0585 .1015 .07 .11

P2 5 .0800 .01871 .00837 .0568 .1032 .05 .10

P3 5 .0600 .01414 .00632 .0424 .0776 .04 .07

Total 20 .0790 .01997 .00447 .0697 .0883 .04 .11

49

ANOVA

Sum of

Squares df

Mean

Square F Sig.

Rasio_HL Between Groups (Combined) .546 3 .182 1.754 .196

Linear Term Contrast .000 1 .000 .002 .968

Deviation .546 2 .273 2.631 .103

Within Groups 1.661 16 .104

Total 2.208 19

Bursa Between Groups (Combined) .007 3 .002 .550 .655

Linear Term Contrast .003 1 .003 .656 .430

Deviation .004 2 .002 .497 .617

Within Groups .066 16 .004

Total .073 19

Limpa Between Groups (Combined) .003 3 .001 4.025 .026

Linear Term Contrast .003 1 .003 10.800 .005

Deviation .000 2 .000 .637 .542

Within Groups .004 16 .000

Total .008 19

Post Hoc Tests

Multiple Comparisons

Dependent Variable (I) Inulin (J) Inulin

Mean

Difference

(I-J) Std. Error Sig.

95% Confidence Interval

Lower Bound Upper Bound

Rasio_HL LSD P0 P1 -.29800 .20379 .163 -.7300 .1340

P2 .14800 .20379 .478 -.2840 .5800

P3 -.14000 .20379 .502 -.5720 .2920

P1 P0 .29800 .20379 .163 -.1340 .7300

P2 .44600* .20379 .044 .0140 .8780

P3 .15800 .20379 .449 -.2740 .5900

50

P2 P0 -.14800 .20379 .478 -.5800 .2840

P1 -.44600* .20379 .044 -.8780 -.0140

P3 -.28800 .20379 .177 -.7200 .1440

P3 P0 .14000 .20379 .502 -.2920 .5720

P1 -.15800 .20379 .449 -.5900 .2740

P2 .28800 .20379 .177 -.1440 .7200

Bursa LSD P0 P1 .03600 .04060 .388 -.0501 .1221

P2 .00800 .04060 .846 -.0781 .0941

P3 .04400 .04060 .294 -.0421 .1301

P1 P0 -.03600 .04060 .388 -.1221 .0501

P2 -.02800 .04060 .500 -.1141 .0581

P3 .00800 .04060 .846 -.0781 .0941

P2 P0 -.00800 .04060 .846 -.0941 .0781

P1 .02800 .04060 .500 -.0581 .1141

P3 .03600 .04060 .388 -.0501 .1221

P3 P0 -.04400 .04060 .294 -.1301 .0421

P1 -.00800 .04060 .846 -.0941 .0781

P2 -.03600 .04060 .388 -.1221 .0501

Limpa LSD P0 P1 .01600 .01039 .143 -.0060 .0380

P2 .01600 .01039 .143 -.0060 .0380

P3 .03600* .01039 .003 .0140 .0580

P1 P0 -.01600 .01039 .143 -.0380 .0060

P2 .00000 .01039 1.000 -.0220 .0220

P3 .02000 .01039 .072 -.0020 .0420

P2 P0 -.01600 .01039 .143 -.0380 .0060

P1 .00000 .01039 1.000 -.0220 .0220

P3 .02000 .01039 .072 -.0020 .0420

P3 P0 -.03600* .01039 .003 -.0580 -.0140

P1 -.02000 .01039 .072 -.0420 .0020

P2 -.02000 .01039 .072 -.0420 .0020

*. The mean difference is significant at the 0.05 level.

51

Homogeneous Subsets

Rasio_HL

Inulin N

Subset for alpha = 0.05

1 2

Duncana P2 5 .4860

P0 5 .6340 .6340

P3 5 .7740 .7740

P1 5 .9320

Sig. .060 .129

Means for groups in homogeneous subsets are

displayed.

a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 5,000.

Limpa

Inulin N

Subset for alpha = 0.05

1 2

Duncana P3 5 .0600

P1 5 .0800 .0800

P2 5 .0800 .0800

P0 5 .0960

Sig. .086 .163

Means for groups in homogeneous subsets are displayed.

a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 5,000.

52

Lampiran 3. Dokumentasi

1. Pembuatan Tepung Umbi Bunga Dahlia

2. Pengambilan Sampel Darah dan Preparat Ulas Darah

3. Pengambilan Sampel Organ Limfoid (Bursa dan Limpa)

53

RIWAYAT HIDUP

Penulis lahir di Salokaraja (Enrekang), tanggal 28 Juli

1993, putri ketiga dari tiga bersaudara, buah hati dari

pasangan bapak Doma dan ibu Ida. Jenjang pendidikan

formal yang pernah ditempuh adalah pendidikan tingkat dasar

di SDN 100 Salokaraja, Kec.Maiwa, Kab.Enrekang dan tamat

pada tahun 2005. Sekolah menengah pertama di M.Ts Negeri 1 Maiwa, Enrekang

dan tamat tahun 2008. Pendidikan menengah atas di SMK/SPP negeri 1 Kulo,

Sidrap pada jurusan kesehatan hewan dan tamat tahun 2011. Tahun 2012

melanjutkan pendidikan ke Perguruan Tinggi Negeri (PTN) melalui jalur tertulis

Seleksi Nasional Masuk Perguruan Tinggi Negeri (SNMPTN) Fakultas

Peternakan, Universitas Hasanuddin.

Date post:	21-May-2020
Category:	Documents
Upload:	others
View:	0 times
Download:	0 times

PREBIOTIK INULIN ASAL UMBI BUNGA DAHLIA (Dahlia variabilis … · 2017-03-18 · penelitian adalah...

Documents