Osnova
biologické axiomy
organisace buněčného metabolismu,
experimentální přístupy ke studiu klíčových reakcí,
turn-over proteinů,
ultracytochemie mikroorganismů,
Biologické axiomy Život na Zemi nebyl vždy, ale vznikl z neživých organických látek.
Současné formy života vznikly evolucí z jediného společného prapředka.
Vývoj probíhal přirozeným výběrem z variet celé populace, kdy variabilita vznikala náhodnými změnami v genomu jedince (mutacemi) nebo rekombinacemi genetického materiálu dvou jedinců.
Obecným trendem evoluce je strukturální komplexita, růst obsahu a organizace informace systému.
Všechny současné organismy mají základní biochemické procesy stejné. U všech je nositelem programu činnosti nukleová kyselina, nástrojem činnosti bílkovina.
Všechny organismy se skládají z buněk.
Identita biologického druhu je dána specifitou nukleových kyselin a bílkovin.
Živá hmota je konstruovanána principu maximální
molekulární úspornosti.
Organismy vytvářejí a udržují vysoký stupeň organizovanosti v málo
organizovaném prostředí na úkor tohoto prostředí, jehož stupeň
uspořádanosti se tím zmenšuje.
Živá hmota je isothermální chemický stroj. Energie přijatá z prostředí je
přeměněna na energii chemické sloučeniny, a ta je použita k práci
chemické, mechanické (pohyb), osmotické, při čemž teplota je v celé
buňce (organismu) konstatntní.
Katalyzátory, které katalyzují reakce probíhající v živé hmotě jsou bílkovinné
makromolekuly – enzymy. Od běžných katalyzátorů chemických reakcí
se liší a během reakcí nevznikají vedlejší reakční produkty.
Jeden enzym je kódován jedním genem.
Životní procesy se realizují interakcemi molekul.
Specifita molekulárních interakcí je výsledkem vzájemné strukturní
komplementarity zúčastněných molekul.
V buňce v tomtéž okamžiku probíhají tisíce chemických reakcí
vycházejících z různých látek a vedoucích k různým produktům.
• Řád v nich je dán – specifitou katalyzátorů
- uspořádáním reakcí do sekvencí
- účinností regulačních mechanismů
V daném okamžiku a v daném prostředí je
aktivní jen část celé genetické informace ,
jenž je určena samotným genetickým
programem a okolnostmi vnějšího prostředí.
Jedná se o regulaci genové exprese.
Jak regulace probíhá?
Genetická informace je jednorozměrná, živá
buňka je trojrozměrná včetně jejích komponent,
které vznikají v důsledku překladu struktury DNA
do struktury bílkovin.
Fyzikální vlastnosti bílkovin a NK mohou být
dostatečnou podmínkou pro jejich uspořádání ve
funkční supramolekulární komplexy. Uspořádání
se uskutečňuje na principu komplementarity a
slabými vazebnými interakcemi.
.
Cytoplasma není neuspořádaný vysoce koncentrovaný
roztok enzymů.
• Jednotlivé oblasti buňky jsou vysoce organizované v určité struktury, které jsou
stabilizovány interakcemi molekul bílkovin.
• Koncentrace intracelulárních bílkovin in vivo je mnohem vyšší než jejich koncentrace in vitro, např. v případě jejich studia.
• Síly jimiž jsou proteiny vázány in vivo do organizovaných intracelulárních struktur, po
izolaci bílkovin z buňky mizí.
Pro organizaci enzymů účastnících se následných reakcí do
určitých struktur byl navržen termín „metabolon“ může
obsahovat volně nebo přechodně vázané globulární
bílkoviny.
• Výhodou takovéhoto uspořádání je snadný průběh dějů
metabolické dráhy přechodem intermediátů mezi sousedními
enzymy bez zbytečné difuse do okolí.
• Celý proces „channeling“ má pro buňku několik výhod:
- chrání nestabilní metabolity udržováním ve stavu vázaném na
bílkoviny
- umožńuje udržovat koncentrační gradient
- udržuje ředící kapacitu vody přítomné v buňce
- kinetické výhody
- rychlé přizpůsobení buňky podmínkám prostředí
Bílkoviny a NK a další složky buněk mají velice často
kratší dobu života než sama buňka
• Uspořádání struktur, ale i funkční místa bílkovin
jsou dána evolucí.
• Molární koncentrace některých enzymů
(glykolytických) jsou velmi vysoké a mnohem
vyšší než interacelulární koncentrace substrátů.
Tato skutečnost je umožněna přímým
předáváním intermediátů mezi jednotlivými
enzymy. Vytvářené koncentrační gradienty
mohou v takovém uspořádání existovat i bez
účasti membránových struktur.
Pro organizaci enzymů účastnících se následných reakcí do
určitých struktur byl navržen termín „metabolon“ může
obsahovat volně nebo přechodně vázané globulární
bílkoviny.
• Výhodou takovéhoto uspořádání je snadný průběh dějů
metabolické dráhy přechodem intermediátů mezi sousedními
enzymy bez zbytečné difuse do okolí.
• Celý proces „channeling“ má pro buňku několik výhod:
- chrání nestabilní metabolity udržováním ve stavu vázaném na
bílkoviny
- umožńuje udržovat koncentrační gradient
- udržuje ředící kapacitu vody přítomné v buňce
- kinetické výhody
- rychlé přizpůsobení buňky podmínkám prostředí
Marjory Stephenson
• 1885 – 1948
• Vedoucí osobnost studia biochemie mikroorga-
nismů, jmenovitě organizace a řízení biochemic-
kých procesů v buňkách, byla zakládající
osobností při tvorbě chemické mikrobiologie a
biochemie mikroorganismů, jedna z předchůdců
molekulární biologie.
• „Holding Hands with Bacteria“ Springer,
• Autor Soňa Štrbáňová
Bioenergetika Energie a enzymy První a druhý zákon termodynamiky v
biologických systémech
Tvorba energie Katabolismus, anabolismus a ATP
Energie biosyntéz Konstrukce komplexnějších molekul a
struktur z menších, jednoduchých
prekursorů
První zákon termodynamiky • Energii nelze ani vytvořit ani zničit
dU = dQ - dW
• Celková energie vesmíru zůstává konstantní
• Energie lze přerozdělit buď uvnitř souboru látek
(matter) označovaných jako systém, nebo mezi
systémem a jeho okolím.
• První termodynamický zákon je zákonem
kvantitativním, který říká, že všechny druhy energie
jsou kvantitativně ekvivalentní (rovnocenné) a
vzájemně je lze transformovat.
Druhý zákon termodynamiky • Fyzikální a chemické procesy probíhají takovým
způsobem, který vede ke zvýšení maximálního možného chaosu vesmíru
• Druhý termodynamický zákon je kvalitativní, uvádí jak probíhají tepelné děje v případě, že je tepelnou energii možno přeměňovat s určitým omezením. Je empirický a pravděpodobnostní.
Entropie dS = dQ/T 0
dQ je dodané teplo
T - teplota. Je zřejmé, že změna entropie systému při konstantní hodnotě tepla je větší při nižší teplotě.
• Pro reversibilní procesy a rovnovážné stavy platí, že změna entropie je nulová dS = 0.
Pro spontánní proces v systému pak platí dS > 0. Můžeme říci, že entropie se nikdy samovolně nezmenšuje.
Energie v mikrobiální buňce
1. Buňky musí účinně přenášet
energii ze svých energii
zachycujících systémů do
systémů, které aktuálně
vykonávají práci
2. Buňky musí také užívat
různé metabolické procesy k
nahrazení energie užité pro
práci
3. Měnovou jednotkou energie
je ATP adenosin 5-trifosfát
Energetický náboj (energy charge)
EC= (ATP+0,5 ADP )/(ATP+ADP+AMP)
Klebsiella aerogenes v chemostatu
(mol/g suché hmoty)
ATP ADP AMP EC
Aerobic 6,5 2,2 1,4 0,75
Anaerobic 3,7 3,9 1,1 0,65
Typy buněčné práce mikroorganismů
1.Chemická práce – syntéza komplexních
molekul
2.Transportní práce – příjem živin, exkrece
odpadů, iontová rovnováha
3. Mechanická práce – vnitřní a vnější
pohyby
4.Elektrická práce – přenos signálů, pH
kontrola
Metabolism as Energy Game
Generation of Energy
Overview of the reactions of cellular synthesis
and biodegradation
Zisk ATP při glykolyse
1. Výtěžek ATP glykolysy a aerobní
respirace je závislý na typu organismu,
ale má teoretické maximum 38 mol
ATP na molekulu katabolizovné
glukosy.
2. Anaerobní organismy využívající
glykolysu mohou tvořit pouze dvě
molekuly ATP z molekuly
katabolizované glukosy.
Anaerobní respirace
A. Užívá jiné anorganické molekuly než je
kyslík jako terminální akceptor
elektronů, tak vzniká dodatečný ATP pro
buňku, ale nikdy v takovém množství,
jaké vzniká při aerobní respiraci.
B. Nejčastějšími akceptory elektronů jsou
nitráty, nitrity, sulfáty, a CO2 ale také
některé kovy mohou být redukovány.
Základní metabolické dráhy jsou univerzální
• Nápadným znakem metabolismu mikroorganismů je podobnost základních metabolických drah u velmi vzdálených druhů.
• Na př. soubor karboxylových kyselin, kterými jsou intermediáty cyklu kyseliny citronové je přítomen ve všech organismech tak odlišných jako je jednobuněčná bakteria Escherichia coli a ohromný mnohobuněčný organismus jako je slon.
• Tyto nápadné podobnosti v metabolismu jsou pravděpodobně výsledek vysoké účinnosti těchto drah a jejich brzkého objevení v evoluci.
Dělení bakterií z hlediska metabolismu
Podle nároků na výživu dělíme bakterie :
1) Autotrofní - zdrojem C jsou anorganické látky (zdroj uhlíku
CO2, zdroj dusíku N2, NH4+, NO3
- )
2) Heterotrofní - zdrojem C jsou organické látky, a to :
a) prototrofní (jednoduché org.látky - ethanol, sacharidy a p.)
b) auxotrofní (vyžadují složité org.látky - např. vitaminy)
Podle nároků na kyslík dělíme bakterie :
1) Aerobní - vyžadují vzdušný kyslík (mají aerobní metabolismus)
2) Anaerobní - vzdušný kyslík působí inhibičně (mají anaerobní
metabolismus)
3) Fakultativně anaerobní – jsou vybaveny pro oba typy
4) Mikroaerofilní – vyžadují redukované množství kyslíku a
zvýšený obsah oxidu uhličitého
Energetický metabolismus bakterií
Z hlediska energetického metabolismu rozlišujeme
tři základní typy metabolismu bakterií :
1) chemoorganotrofie- Zdrojem energie je oxidace redukované
organické látky. Tato látka je současně zdrojem uhlíku.
2) chemolithotrofie - Zdrojem energie je oxidace redukova-
né anorganické látky. Zdrojem uhlíku je CO2. Patří sem např.:
a) sirné bakterie - Zdrojem energie je oxidace síry a sirných
sloučenin.
b) nitrifikační bakterie - Zdrojem energie je oxidace dusíku
c) železité bakterie - Zdrojem energie je oxidace železnatých
iontů
d) ostatní chemolithotrofní bakterie
3) fototrofie - Zdrojem energie je světlo a zdrojem uhlíku je CO2
(fotoautotrofie) nebo organická látka (fotoorganotrofie).
chemolithotrofie
• U chemolithotrofů, sloučeniny - donory
elektronů - jsou oxidovány v buňkách, a
elektrony se včleňují do respiračních
řetězců, které končí tvorbou ATP. Akceptorem elektronů je kyslík (u aerobních
bakterií), ale mikroorganismy používají velké
množství dalších akceptorů elektronů, jak
organických tak anorganických,v závislosti na
druhu.
Ukázky bakterií užívajících jednak kyslík nebo siru
jako akceptor elektronů
• Železité bakterie oxidují železnatý iont (Fe2+) na železitý iont (Fe3+)
• Nitrifikační bakterie oxidují amonný iont na nitrit nebo na nitrát.
• Purpurové sirné bakterie a některé chemolithotrofní oxidují sulfidy
na síru. Užívají kyslík jako akceptor elektronů.
• Sirné bakterie užívají oxidované sloučeniny síry k tvorbě sulfidů.
Mohou také užívat celou řadu dalších různě oxidovaných sloučenin
síry (např. sulfáty, thiosulfáty, thionáty, polysulfidy, sulfity). Tady je
akceptor elektronů síra.
• Vodíkové bakterie oxidují vodík na vodu.
• Karboxydotrofní bakterie oxidují oxid uhelnatý na oxid uhličitý.
Bakterie užívající jiný akceptor eletronů než
kyslík
• Methanogeny jsou Archaea schopné oxidace vodíku za použití redukce oxidu uhličitého na methan.
• Thiobacillus denitrificans je jednou z mnoha sirných
bakterií, které oxidují redukované sirné sloučeniny s
použitím nitrátu místo kyslíku.
• Nedávno objevená Anammox oxiduje amonium za
využití nitritu jako akceptoru elektronů a tvoří plynný dusík.
• Fosfitové bakterie PO3 2- oxidují fosfit na fosfát.
Užívají sulfát jako akceptor elektronů, a redukují jej na sulfid.
Typy lithotrofie
• Lithoheterotrofy nemohou fixovat oxid uhličitý a musejí využívat přídavné organické sloučeniny, rozkládat je a používat tento uhlík. Velmi málo bakterií je plně heterolithotrofních.
• Lithoautotrofy jsou schopné používat oxid uhličitý ze vzduchu jako zdroj uhlíku,stejným způsobem jako rostliny.
• Mixotrofy přijímají a utilizují organické látky na doplnění fixace oxidu uhličitého (směs=mix mezi autotrofií a heterotrofií). Mnoho lithotrofů je řazeno jako mixotrofní vzhledem k jejich C-metabolismu.
Transkripce DNA do RNA enzymem RNA-
polymerasou
Buňka uskutečňuje své genetické informace teprve transkripcí a
translací DNA do RNA a pak do bílkovin. Nejprve dojde
k rozvolnění určitého úseku dvojšroubovice DNA, pak jeden
z uvolněného úseku slouží jako matice (templát) pro tvorbu RNA.
RNA-polymerasa
-faktor
místo rozepnutí
dvojšroubovnice DNA
RNA-transkript
místo opětného spojení
RNA polymerasa – objevena v roce 1961
• Katalyzuje vazbu ribonukleosidtrifosfátů
ATP, CTP, GTP, a UTP na templátu DNA
U prokaryot je holoenzym RNA polymerasa složen z
podjednotek – α2 ββ´ω σ .
Zahajuje transkripci vazbou na oblast 40 až 60 párů bazí (bp), která
obsahuje dva konservované promotorové úseky:
-10 sekvence (Pribnow box) se strukturou TATAAT
- 35 sekvence se strukturou TTGACA
Pro iniciaci je zásadní σ faktor.
sigma faktor - σ faktor
• σ faktor je protein nutný pouze pro iniciaci
transkripce . Jedná se bakteriální iniciační
faktoe transkripce, který umožňuje specifickou
vazbu RNA polymerasy na promotor genu. Je
homologní s archaelárním transkripčním
faktorem B a s eukaryotickým TFIIB.
Výběr promotorů RNA polymerasou je závislý
na typu sigma faktoru se kterým je propojena.
struktura podjednotky α2ββ′ holoenzym α2ββ′σ
Typy sigma faktorů
• σ70(RpoD) – σA – "housekeeping" sigma faktor také
označovaný jako primární sigma faktor, přepisuje
většinu genů v rostoucích buňkách.
• σ32 (RpoH) – sigma faktor „heat shocku“, nastupuje
tehdy, když jsou bakterie vystaveny teplu.
• σ38 (RpoS) – sigma faktor při hladovění/stacionární
fáze.
Po iniciaci mění σ podjednotka typ vazby k holoenzymu,
který provádí syntézu RNA ve směru od 5´konce k 3´.
• Získaný RNA transkript u prokaryot nepotřebuje další
úpravy.
• 3 fáze transkripce: iniciace, elongace a terminace.
• DNA se rozplétá od promotoru na dva řetězce, RNA
polymerasa pak používá vlákno označované
„antisense“, nebo také minus (-).
• Vzniklá RNA má tedy stejnou sekvenci jako
netemplátový řetězec „sense“ (+) s vyjímkou obsahu U
místo T.
“Protein turnover” je rovnováha mezi syntézou a
degradací proteinů
• Syntéza převažuje při anabolismu , naopak při katabolických procesech převažuje degradace.
• Degradaci zajišťují proteasy, široké spektrum enzymů.
• Proteasomy- nitrobuněčné proteolytické struktury tvořené „self-assembly“ proteasami a ATPasami. U eukaryot – ubikvitin
• Prokaryotní proteasomy u Archaea - Methanosarcina thermophila, Thermoplasma acidiphilum
• Bakteriální – Mycobacterium tuberculosis, Rhodococcus erythropolis
• Degradace pomocí proteasomů je zásadní pro mnoho buněčných procesů, včetně buněčného cyklu, regulace exprese genů, a odpověď na oxidativní stress.
• Význam proteolytické degradace uvnitř buněk a role ubikvitinu při proteolytických procesech byla zhodnocena roku 2004 Nobel Prize -
• za chemii: Aaron Ciechanover, Avram Hershko a Irwin Rose.
Proteasomy jsou proteinové komplexy u všech eukaryot a
archaebakterií, a také u některých bakterií.
• U eukaryot, jsou lokalizovány v jádře a v cytoplasmě.
• Hlavní funkcí proteasomů je degradace nepotřebných
nebo poškozených proteinů proteolysou a chemickými
rekcemi, které rozbíjejí peptivé vazby.
• Enzymy provádějící tyto reakce jsou označovány jako
proteasy.
• Proteasomy jsou součástí hlavního mechanismu, kterým
buňky regulují koncentraci určitých proteinů a degradují
špatně složené proteiny.
Proteasom
Hlavní metabolické dráhy – E.coli
PRPP – fosforibosylpyro-
fosfát
Hlavní metabolické dráhy – Buchnera sp.
Gama- proteobakterie, 600 genů
Sdílení genů
• ..
Studium metabolismu mikroorganismů
• Celé buňky
• Protoplasty a sféroplasty
• Homogenáty buněk
• Jednotlivé frakce homogenátů
• DNA
• RNA
Sledování kvantity jednotlivých složek media
• Zdroje C – glukosa, další cukry,polysacharidy,
uhlovodíky, org.kyseliny,
Zdroje N – NO3, NH4, aminokyseliny
Zdroj P - fosfáty
Elektronová mikroskopie
• Transmisní elektronová mikroskopie (TEM)
- viditelný obraz se vytváří na fluorescenčním stínítku svazkem elektronů, které prošly studovaným vzorkem, nebo které ve vzorku difraktovaly.
- proud elektronů prochází tzv. elektronovou čočkou, kterou tvoří el. pole zvláštního kondenzátoru, nebo mag. pole cívky. tato elektronová čočka soustřeďuje elektrony na pozorovaný předmět (preparát).
- vrstva preparátu musí být velmi tenká, přibližně 1µm, aby nepohlcovala elektrony.
- pracuje se ve vakuu – neumožňuje pozorovat živé organismy
• Rastrovací elektronová mikroskopie (SEM)
- rastrovací elektronový mikroskop pracuje tak, že na vzorek dopadá tenký svazek elektronů, který dopadá postupně na všechna místa vzorku. Odražený (emitovaný) paprsek se převádí na viditelný obraz
- studování povrchových struktur
Jádro E. coli v elektronovém a
světelném mikroskopu
Staphylococcus aureus
Elektronová mikroskopie → metody přípravy vzorku
• chemická cesta A/ přímá metoda, kdy do mikroskopu vkládáme celý studovaný objekt
zbavený vody
B/ metoda nepřímá, kdy v mikroskopu pozorujeme repliku studovaného objektu, ne samotný objekt.
- fixace - stabilita vzorku
- zalití do pryskyřice
• fyzikální cesta - mrazicí metody
TEM (imerzní kryofixace, sprejová metoda, jet freezing, mražení pomocí kovového zrcadla, mražení při vysokém tlaku)
SEM (Kryofixace, mrazové lámání, mrazové leptání, mrazové sušení)
- mikrovlny
• ostatní - metoda negativního kontrastu (TEM)
- pokovení materiálu (SEM) – zvýšení povrchové vodivosti
Ultratenký řez
Ultratenký řez bakterie
Caryophanon latum G+
PHB- poly-β-hydroxybutyrát
3 μm průměr, 10 - 40 μm délka
Caryophanon latum G+
Pseudomonas putida - transmisní
elektronová mikroskopie poly P a PHA
Bacillus subtilis – lipidové spirály
Mikroskopie atomárních sil
• Mikroskopie atomárních sil (AFM z anglického atomic
force microscopy) je mikroskopická technika, která se
používá k trojrozměrnému zobrazování povrchů. Prvně
ji realizovali v roce 1986 Binnig, Quate a Gerber.
• Obraz povrchu se zde sestavuje postupně, bod po
bodu. Metoda dosahuje velmi vysokého rozlišení.
Techniku AFM lze použít nejen k zobrazování, ale také k
tvorbě struktur či zpracování povrchů v nanometrové
oblasti.
Spory Aspergillus oryzae
Dormantní spora klíčící spora
Konfokální mikroskopie • Konfokální mikroskopii - rozlišení a kontrast vyšší než u ostatních
metod světelné mikroskopie.
• Výhodou je především potlačení signálu z rovin nad a pod rovinou
zaostření a možnost snímání sérií optických řezů, jejichž skládáním
lze rekonstruovat pozorovaný objekt v 2,5D projekci.
Tím jsou dané vysoké nároky na komplexní provoz, tj. technické
vybavení a rychlost PC. Předností a zároveň omezením metody je
využití laseru jako zdroje světla, protože intenzivní osvětlení vzorku
přispívá k rychlejšímu vysvícení použitých fluorochromů nejen v místě
snímání, ale i v místech kudy paprsek prochází k místu zaostření.